Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены ГОСТ 1.0-92 "Межгосударственная система стандартизации. Основные положения" и ГОСТ 1.2-2009 "Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, применения, обновления и отмены".

1. Подготовлен Государственным научным учреждением Всероссийским научно-исследовательским институтом консервной и овощесушильной промышленности Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИКОП Россельхозакадемии).

2. Внесен Федеральным агентством по техническому регулированию и метрологии (ТК 335).

3. Принят Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (Протокол N 58-П от 28 августа 2013 г.).

За принятие проголосовали:

4. Настоящий стандарт модифицирован по отношению к международному стандарту ISO 15214:1998. Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the enumeration of mesophilic lactic acid bacteria - Colony-count technique at 30 °C (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод подсчета мезофильных молочнокислых бактерий. Метод подсчета колоний при температуре 30 °C).

Международный стандарт разработан подкомитетом ISO/TC 34/SC 9 "Microbiology" технического комитета по стандартизации ISO/TC 34 "Food products" Международной организации по стандартизации (ISO).

Перевод с английского языка (en).

Официальный экземпляр международного стандарта, на основе которого подготовлен настоящий межгосударственный стандарт, имеется в Федеральном агентстве по техническому регулированию и метрологии Российской Федерации.

Степень соответствия - модифицированная (MOD).

5. Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 22 ноября 2013 г. N 1744-ст межгосударственный стандарт ГОСТ 10444.11-2013 (ISO 15214:1998) введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 января 2015 г.

6. Взамен ГОСТ 10444.11-89.

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном информационном указателе "Национальные стандарты", а текст изменений и поправок - в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет.

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты и корма для животных и устанавливает метод выявления мезофильных молочнокислых микроорганизмов и методы подсчета их количества:

- метод наиболее вероятного числа (НВЧ);

- методы посева в или на плотные среды.

Метод наиболее вероятного числа предназначен для пищевых продуктов, содержащих в 1 г твердого продукта не более 150 или в 1 см3 жидкого продукта не более 15 клеток молочнокислых микроорганизмов.

Метод посева в агаризованные питательные среды предназначен для пищевых продуктов, содержащих в 1 г твердого продукта не менее 150 или в 1 см3 жидкого продукта не менее 15 колониеобразующих единиц (КОЕ) молочнокислых микроорганизмов.

Метод посева на агаризованные питательные среды предназначен для пищевых продуктов, содержащих в 1 г твердого продукта не менее 1500 или в 1 см3 жидкого продукта не менее 150 КОЕ молочнокислых микроорганизмов.

Методы применимы также для выяснения причин возникновения порчи пищевых продуктов и для испытания проб окружающей среды, отобранных из зоны производства и переработки пищевых продуктов.

В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие межгосударственные стандарты:

ГОСТ 6709-72 Вода дистиллированная. Технические условия

ГОСТ ISO 7218-2011 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требования и рекомендации по микробиологическим исследованиям

ГОСТ 10444.1-84 Консервы. Приготовление растворов реактивов, красок, индикаторов и питательных сред, применяемых в микробиологическом анализе

ГОСТ 25336-82 Посуда и оборудование лабораторные стеклянные. Типы, основные параметры и размеры

ГОСТ 26669-85 Продукты пищевые и вкусовые. Подготовка проб для микробиологических анализов

ГОСТ 26670-91 Продукты пищевые. Методы культивирования микроорганизмов

ГОСТ 29228-91 (ИСО 835-2-81) Посуда лабораторная стеклянная. Пипетки градуированные. Часть 2. Пипетки градуированные без установленного времени ожидания

ГОСТ 30425-97 Консервы. Метод определения промышленной стерильности.

Примечание. При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодному информационному указателю "Национальные стандарты", который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по выпускам ежемесячного информационного указателя "Национальные стандарты" за текущий год. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

В настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями:

3.1. Молочнокислые микроорганизмы: микроорганизмы из родов Lactobacillus, Leuconostoc, Pediococcus, Streptococcus.

3.2. Мезофильные молочнокислые микроорганизмы: микроорганизмы, которые образуют типичные колонии в или на плотных питательных средах или проявляют характерные признаки роста в жидких средах при температуре инкубирования посевов 30 - 37 °C и которые дают характерные реакции при подтверждении в условиях, устанавливаемых в настоящем стандарте.

Методы выявления и определения количества молочнокислых микроорганизмов основаны на высеве определенного количества продукта и (или) его разведения в жидкие, в или на плотные питательные среды, культивировании посевов в оптимальных для роста условиях и при необходимости подсчета их количества и определения морфологических и биохимических свойств.

5.1. Растворы для разведений

Растворы для разведений - по [1] - [4] и ГОСТ 26669 или любому другому стандарту, касающемуся исследуемого продукта.

5.2. Питательные среды, растворы реактивов

5.2.1. Среда MRS

5.2.1.1. Состав

5.2.2. Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную готовую среду в воде при нагревании. С помощью pH-метра (см. 6.5) устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (5,7 +/- 0,1) ед. pH при температуре 25 °C.

Переносят среду в сосуды соответствующей вместимости и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (121 +/- 1) °C в течение 15 мин.

Если среду необходимо использовать немедленно, то ее охлаждают до температуры приблизительно 47 °C на водяной бане (см. 6.4) или любым другим способом, дающим аналогичные результаты.

Если среда не будет использоваться сразу, то перед началом микробиологических исследований среду полностью расплавляют на кипящей водяной бане, а затем охлаждают до температуры приблизительно 47 °C на водяной бане (см. 6.4).

Если предполагается значительное содержание дрожжей в испытуемом продукте (например, в сухой колбасе), то добавляют сорбиновую кислоту в агар MRS. Для этого растворяют 1,4 г сорбиновой кислоты приблизительно в 10 см3 раствора гидроксида натрия молярной концентрацией 1 моль/дм3. Раствор стерилизуют фильтрованием. Добавляют этот раствор в 1000 см3 стерилизованного агара MRS, предварительно охлажденного до температуры приблизительно 47 °C. Конечное значение pH среды должно быть (5,7 +/- 0,1) ед. pH при температуре 25 °C.

5.3. Среда Бликфельдта плотная

5.3.1. Состав

5.3.2. Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную готовую среду в воде при нагревании. С помощью pH-метра (см. 6.5) устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (7,3 +/- 0,1) ед. pH при температуре 25 °C.

Переносят среду в сосуды соответствующей вместимости и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (117 +/- 1) °C не более 15 мин.

Перед разливкой по чашкам Петри среду осторожно перемешивают, чтобы углекислый кальций распределился равномерно.

5.4. Жидкая среда Бликфельдта

5.4.1. Состав

5.4.2. Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную готовую среду в воде при нагревании. С помощью pH-метра (см. 6.5) устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (7,3 +/- 0,1) ед. pH при температуре 25 °C.

Разливают среду в пробирки и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (117 +/- 1) °C не более 15 мин.

5.4.3. Раствор бромкрезолового пурпурного

5.4.3.1. Состав

5.4.3.2. Приготовление

Бромкрезоловый пурпурный, смывая стерильной дистиллированной водой, переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3, доводят объем этой же водой до метки. Раствор хранят не более 3 мес при комнатной температуре.

5.5. Среда Ли

5.5.1. Состав

5.5.2. Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную готовую среду в воде при нагревании. С помощью pH-метра (см. 6.5) устанавливают pH так чтобы, после стерилизации он составлял (7,0 +/- 0,2) ед. pH при температуре 25 °C.

Переносят среду в сосуды соответствующей вместимости и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (121 +/- 1) °C в течение 20 мин.

Перед разливкой по чашкам Петри среду осторожно перемешивают, чтобы углекислый кальций распределился равномерно.

5.6. Среда для определения псевдокаталазы

5.6.1. Состав

5.6.2. Приготовление

Растворяют компоненты в воде при нагревании на водяной бане. С помощью pH-метра (см. 6.5) устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (6,9 +/- 0,1) ед. pH при температуре 25 °C.

Разливают среду в пробирки по 5 - 7 см3 и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (121 +/- 1) °C в течение 15 мин.

После стерилизации пробирки помещают на наклонную поверхность для получения скошенной поверхности среды.

5.7. Мясопептонный бульон с pH = 9,6

5.7.1. Состав

5.7.2. Приготовление

Устанавливают pH мясопептонного бульона так, чтобы после стерилизации он составлял (9,6 +/- 0,1) ед. pH при температуре 25 °C.

Разливают среду в пробирки по 5 - 7 см3 и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (121 +/- 1) °C в течение 20 мин.

5.8. Мясопептонный бульон с 6,5% NaCl

5.8.1. Состав

5.8.2. Приготовление

Растворяют при нагревании хлористый натрий в мясопептонном бульоне. Разливают среду в пробирки по 5 - 7 см3 и стерилизуют в автоклаве (см. 6.1) при температуре (121 +/- 1) °C в течение 20 мин.

5.9. Раствор нигрозина

5.9.1. Состав

5.9.2. Приготовление

Нигрозин переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3, смывая дистиллированной водой, объем доводят до метки, нагревают до температуры 45 - 50 °C на водяной бане, затем фильтруют через ватно-марлевый фильтр.

5.10. Реактив для определения цитохромов

5.10.1. Состав

5.10.2. Приготовление

Бензидин растворяют в ледяной уксусной кислоте, добавляют дистиллированную воду и медленно нагревают, после охлаждения в раствор вносят этиловый спирт. Раствор хранят в холодильнике в течение 1 мес.

5.11. Раствор карболфуксина

5.11.1. Состав

5.11.2. Приготовление

Карболфуксин смешивают с этиловым спиртом и раствором фенола.

Для приготовления рабочего раствора карболфуксина к 10 см3 концентрированного раствора карболфуксина добавляют 90 см3 дистиллированной воды.

5.12. Допускается использование готовых и дегидратированных питательных сред, в т.ч. хромогенных, и их компонентов, по качеству не уступающих вышеуказанным.

Приготовление и применение питательных сред - в соответствии с требованиями нормативных документов стран, принявших стандарт.

Приемлемой альтернативой посуды многоразового применения является одноразовая посуда, если она отвечает соответствующим требованиям. Одноразовая посуда предпочтительнее многоразовой.

Применяют микробиологическое лабораторное оборудование по ГОСТ ISO 7218, ГОСТ 10444.1:

6.1. Оборудование для сухой стерилизации (сушильный шкаф) или стерилизации паром (автоклавы).

6.2. Сушильный шкаф или инкубатор, с конвекционной вентиляцией, для сушки агаровых пластин, поддерживающий температуру от (37 +/- 1) °C до (55 +/- 1) °C.

6.3. Инкубаторы (термостаты), поддерживающие температуру (30 +/- 1) °C или (37 +/- 1) °C.

6.4. Бани водяные, поддерживающие температуру от 44 °C до 47 °C.

6.5. pH-метр, с точностью +/- 0,1 ед. pH при температуре 25 °C.

6.6. Чашки Петри, стеклянные или пластмассовые, диаметром от 90 до 100 мм или, если необходимо, 140 мм по ГОСТ 25336.

6.7. Пипетки градуированные, калиброванные только для бактериологического применения, номинальной вместимостью 10, 2 и 1 см3, с ценой деления 0,5 и 0,1 см3 и с выходным отверстием с номинальным диаметром от 2 до 3 мм по ГОСТ 29228.

6.8. Шпатели из стеклянного или пластмассового стержня диаметром приблизительно 3,5 мм и длиной 20 см, изогнутые под прямым углом на расстоянии около 3 см от одного конца; обрезанные концы должны быть ровными (оплавленными).

Отбор проб - по нормативным документам государства, принявшего стандарт.

Важно, чтобы в лабораторию поступала представительная проба, которая не была повреждена или изменена при транспортировке или хранении.

Отбор проб не является частью метода, установленного в настоящем стандарте. В случае отсутствия конкретного стандарта на отбор проб продукта рекомендуется, чтобы заинтересованные стороны достигли согласия по процедуре отбора проб.

Пробы для испытания приготавливают в соответствии с [1] - [4], ГОСТ 26669 или стандартом, распространяющимся на конкретный продукт. При отсутствии соответствующего стандарта рекомендуется, чтобы заинтересованные стороны достигли согласия по этому вопросу.

9.1. Проба для анализа, исходная суспензия и разведения

По [1] - [4], ГОСТ 26669 и соответствующего стандарта на конкретный продукт.

9.2. Инокуляция и инкубация

9.2.1. В каждую из двух стерильных чашек Петри переносят с помощью стерильной пипетки 1 см3 пробы для анализа, если продукт жидкий, или 1 см3 исходной суспензии в случае испытания продукта другой консистенции.

Если необходимо, повторяют процедуру, используя последующие десятичные разведения.

Примечание. Если ожидается рост большого числа молочнокислых бактерий, можно инокулировать только те разведения, которые необходимы для подсчета.

9.2.2. Заливают в каждую чашку Петри приблизительно 15 см3 плотной среды, которая приготовлена и охлаждена до температуры приблизительно 47 °C на водяной бане (см. 6.4).

Тщательно перемешивают посевной материал со средой и дают смеси застыть на горизонтальной поверхности.

9.2.3. При поверхностном способе посева в каждую из двух чашек Петри с агаром переносят с помощью стерильной пипетки 0,1 или 0,2 см3 пробы для анализа, если продукт жидкий, или исходную суспензию в случае испытания продукта другой консистенции. Если необходимо, повторяют процедуру, используя последующие десятичные разведения.

Если для некоторых продуктов необходимо определить небольшое количество микроорганизмов, то пределы обнаружения могут быть увеличены в 10 раз в результате исследования 1,0 см3 пробы для анализа, если исходный продукт жидкий, или 1,0 см3 исходной суспензии для продуктов других консистенций. В этом случае распределяют 1 см3 инокулята или на поверхности большой чашки Петри (диаметром 140 мм), или на поверхности пяти маленьких чашек (диаметром 90 мм). В обоих случаях посевы проводят в двух повторностях, используя две большие чашки или десять маленьких чашек.

Примечание. Посев на поверхность в сочетании с инкубацией в анаэробных или микроаэробных условиях применяют вместо посева заливкой.

Ограничение доступа кислорода осуществляют одним из способов, указанных в ГОСТ 30425-97:

на застывшую плотную питательную среду в чашках Петри наливают второй слой расплавленной и охлажденной до (45 +/- 1) °C плотной среды в объеме приблизительно 5,0 см3 и оставляют для затвердения;

чашки Петри помещают в газовую среду, состоящую из 95% и 5% ;

чашки Петри помещают в анаэростат. Аппарат закрывают и создают вакуум 86,6 - 93,3 кПа;

в каждую пробирку с жидкой средой наслаивают стерильный жидкий парафин в количестве, необходимом для получения высоты столба равным приблизительно 2 см.

Тщательно и быстро распределяют инокулят по поверхности чашки с агаром, не касаясь сторон чашки шпателем (см. 6.8). Используют новый стерильный шпатель для каждой чашки. Оставляют чашки с закрытыми крышками на 15 мин при температуре окружающей среды для впитывания инокулята агаром.

9.2.4. Переворачивают засеянные чашки Петри (донышком вверх) и помещают в инкубатор (см. 6.3).

Посевы инкубируют при температуре (30 +/- 1) °C не более 5 сут. Допускается инкубировать посевы не более 3 сут при температуре (37 +/- 1) °C.

Необходимо избегать подсушивания агара во время инкубации, чтобы среда не угнетала рост микроорганизмов.

9.2.5. При определении количества молочнокислых микроорганизмов по методу НВЧ или при выявлении молочнокислых микроорганизмов в определенной анализируемой пробе продукта проводят посевы в жидкую среду. При определении количества молочнокислых микроорганизмов по методу НВЧ каждую анализируемую пробу исследуемого продукта и (или) его разведение в трехкратной повторности высевают в пробирки с жидкой средой, высевают не менее трех последовательных анализируемых проб исследуемого продукта и (или) его разведения, отличающиеся по количеству продукта в них в 10 раз.

При выявлении молочнокислых микроорганизмов в определенной анализируемой пробе продукта эту анализируемую пробу высевают в жидкую среду. Соотношение количества высеваемого продукта к количеству среды должно быть не менее 1:9.

Если при внесении продукта цвет среды меняется (за счет изменения величины pH), то его восстанавливают с помощью стерильных растворов щелочи и кислоты.

Посевы на жидких средах инкубируют по 9.2.4, ежедневно просматривают, инкубирование посевов прекращают при появлении видимых признаков роста. Рост молочнокислых микроорганизмов на жидкой среде сопровождается изменением цвета среды от фиолетового до желтого, помутнением среды или образованием осадка, возможно выделение газа.

Из пробирок с признаками роста проводят пересев петлей на плотную среду так, чтобы получить рост изолированных колоний.

9.2.6. Предварительный подсчет количества выросших колоний на плотных средах проводят через 48 ч. После термостатирования посевов по 9.2.4 отбирают чашки, на которых выросло от 15 до 150 типичных колоний. Характеристика типичных для молочнокислых микроорганизмов колоний приведена в Приложении А.

9.2.7. Для подтверждения принадлежности типичных колоний к молочнокислым микроорганизмам отбирают из посевов не менее 5 колоний. Принадлежность каждой отобранной колонии к определенным микроорганизмам устанавливают по отношению к окраске по Граму, подвижности, наличию каталазы, дополнительно при идентификации бактерий рода Leuconostoc определяют наличие капсул, при идентификации стрептококков рода Streptococcus отсутствие роста в мясопептонном бульоне с 9,6 ед. pH и в мясопептонном бульоне с 6,5% NaCl.

9.2.7.1. Для определения отношения микроорганизмов к окраске по Граму из колоний приготавливают мазки, окрашивают их по ГОСТ 30425 и микроскопируют. Допускается окраску по Граму заменять тестом Грегерсена. Для этого на предметном стекле в капле 3%-ного водного раствора калия гидроокиси эмульгируют культуру микроорганизмов, взятую из колонии с плотной среды. Если через несколько секунд взвесь ослизняется и за петлей тянутся слизистые нити, то это указывает на принадлежность испытуемой культуры к грамотрицательным бактериям. У грамположительных бактерий слизистых нитей не образуется.

9.2.7.2. Для изучения подвижности микроорганизмов из колоний приготавливают препараты методом висячей или раздавленной капли и микроскопируют. Результаты микроскопирования оценивают в соответствии с Приложением Б. Подвижность допускается определять посевом в полужидкие среды.

9.2.7.3. Каталазную активность культур определяют по ГОСТ 30425.

Результаты определения каталазной активности оценивают в соответствии с Приложением Б.

Разложение перекиси водорода у бактерий рода Pediococcus возможно за счет фермента псевдокаталазы. Поэтому при определении молочнокислых микроорганизмов или бактерий рода Pediococcus в случае, если в характерных колониях обнаружены грамположительные, неподвижные микроорганизмы, дающие положительную каталазную реакцию, контролируют отсутствие цитохромов путем постановки бензидинового теста. Для этого выросшие на чашках Петри колонии микроорганизмов 24 - 48-часового возраста заливают раствором бензидина, приготовленным по 5.10. После того как раствор пропитает колонии, прибавляют в чашку приблизительно такой же объем 5%-ной перекиси водорода. Молочнокислые микроорганизмы, в том числе рода Pediococcus, не содержат цитохромов. В случае присутствия цитохромов колонии окрашиваются в голубовато-зеленый или ярко-голубой цвет.

При отсутствии бензидина допускается проводить определение наличия псевдокаталазы на среде, приготовленной по 5.6, с низкой концентрацией глюкозы 0,05%.

Посевы инкубируют по 9.2.4, определение псевдокаталазы проводят так же, как и каталазы, по ГОСТ 30425.

Культуры, образующие псевдокаталазу, относят к роду Pediococcus.

9.2.7.4. При идентификации бактерий рода Leuconostoc готовят препараты и окрашивают их по Бури для выявления бактериальных капсул. Для этого на хорошо обезжиренном и обожженном предметном стекле смешивают каплю бактериальной культуры с мелким порошком черной туши или суспензией нигрозина, приготовленной по 5.9.

С помощью другого стекла со шлифованными краями быстро готовят тонкий мазок, который фиксируют, несколько раз проводя его через пламя горелки. Мазок докрашивают раствором кристаллического фиолетового или рабочим раствором карболфуксина, приготовленном по 5.11. Мазок осторожно промывают в сосуде с водой, оставляют на воздухе для высыхания и микроскопируют. Не допускается сушить мазок между листами фильтровальной бумаги. Фон препарата окрашивается тонкой суспензией черной туши или нигрозина. Тела бактерий окрашиваются монохроматично, капсулы остаются неокрашенными.

9.2.7.5. При идентификации микроорганизмов рода Streptococcus определяют отсутствие роста на мясопептонном бульоне с 9,6 ед. pH и на мясопептонном бульоне с содержанием хлористого натрия 6,5%. Для этого культуры, полученные по 9.2.7, пересевают на среды, приготовленные по 5.7 и 5.8.

Посевы инкубируют при температуре (30 +/- 1) °C в течение 3 сут.

10.1. Результаты анализа продукта оценивают по каждой пробе отдельно.

10.2. Если при изучении культуральных, морфологических и биохимических свойств при определении:

- молочнокислых микроорганизмов обнаружены грамположительные, неподвижные, каталазоотрицательные палочки или неспорообразующие, грамположительные, неподвижные, каталазоотрицательные или образующие псевдокаталазу кокки, то дают заключение о том, что обнаруженные микроорганизмы относятся к мезофильным молочнокислым;

- бактерий рода Lactobacillus обнаружены неспорообразующие, грамположительные, неподвижные, каталазоотрицательные палочки, то дают заключение о том, что обнаруженные микроорганизмы относятся к роду Lactobacillus;

- бактерий рода Leuconostoc обнаружены неспорообразующие, грамположительные, неподвижные, каталазоотрицательные, окруженные капсулой кокки, то дают заключение о том, что обнаруженные микроорганизмы относятся к роду Leuconostoc;

- бактерий рода Streptococcus обнаружены неспорообразующие, грамположительные, неподвижные, каталазоотрицательные, не дающие роста в питательных средах с 9,6 ед. pH и 6,5% NaCl кокки, то дают заключение о том, что обнаруженные микроорганизмы относятся к роду Streptococcus;

- бактерий рода Pediococcus обнаружены неспорообразующие, грамположительные, неподвижные, каталазоотрицательные (или каталазоположительные, но дающие отрицательный бензидиновый тест) или псевдокаталазоположительные кокки, то дают заключение о том, что обнаруженные микроорганизмы относятся к роду Pediococcus.

10.3. Если при подтверждении характерных колоний в 80% случаев, то есть не менее чем в 4 из 5 колоний, подтвержден рост определенных групп или родов микроорганизмов, то считают, что все характерные колонии, выросшие на чашке Петри, принадлежат к этой группе или роду. В остальных случаях количество микроорганизмов определяют, исходя из процентного отношения подтвержденных колоний к общему количеству колоний, взятых для подтверждения.

10.4. При определении НВЧ или при посеве продукта на жидкие среды пробирки с посевами считают положительными, если при последующем пересеве на плотные среды и подтверждении характерных колоний хотя бы в одной колонии обнаружены молочнокислые микроорганизмы.

10.5. Для подсчета наиболее вероятного числа (НВЧ) молочнокислых микроорганизмов в 1 г или 1 см3 пользуются таблицей и указанием к таблице ГОСТ 26670 или нормативными документами стран, принявших стандарт.

10.6. Результаты определения присутствия микроорганизмов в определенной анализируемой пробе продукта выражают следующим образом: молочнокислые микроорганизмы (при необходимости указывается род) обнаружены или не обнаружены в пробе продукта.

10.7. Результаты количественного определения по методу НВЧ или посевом на чашки Петри записывают по ГОСТ 26670.

Протокол испытаний должен включать:

a) всю информацию, необходимую для полной идентификации пробы;

b) применяемый метод отбора проб, если он известен;

c) применяемый метод испытания со ссылкой на настоящий стандарт;

d) температуру инкубации;

e) все рабочие подробности, не установленные в настоящем стандарте или считающиеся необязательными, вместе с подробностями всех инцидентов, которые могли бы повлиять на результат(ы) испытания;

f) полученный(ые) результат(ы) испытания.

Характеристика колоний молочнокислых микроорганизмов на плотных средах приведена в таблице А.