Цели, основные принципы и общие правила проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены ГОСТ 1.0 "Межгосударственная система стандартизации. Основные положения" и ГОСТ 1.2 "Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, обновления и отмены"

1 ПОДГОТОВЛЕН Федеральным государственным бюджетным учреждением науки "Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи" (ФГБУН "ФИЦ питания и биотехнологии") на основе собственного перевода на русский язык англоязычной версии стандарта, указанного в пункте 5.

2 ВНЕСЕН Федеральным агентством по техническому регулированию и метрологии

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 31 октября 2024 г. N 178-П)

За принятие проголосовали:

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 26 декабря 2024 г. N 2008-ст межгосударственный стандарт ГОСТ ISO 22964-2024 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 ноября 2025 г. с правом досрочного применения.

5 Настоящий стандарт идентичен международному стандарту ISO 22964:2017 "Микробиология пищевой цепи. Горизонтальный метод обнаружения Cronobacter spp." ("Microbiology of the food chain - Horizontal method for the detection of Cronobacter spp.", IDT).

Международный стандарт подготовлен Европейским комитетом по стандартизации (CEN), Техническим комитетом CEN/TC 275 "Анализ пищевых продуктов. Горизонтальные методы определения" в сотрудничестве с подкомитетом SC 9 "Микробиология" Технического комитета ISO TC 34 "Пищевые продукты" в соответствии с соглашением по техническому сотрудничеству между ISO и CEN (Венское соглашение).

При применении настоящего стандарта рекомендуется использовать вместо ссылочных международных стандартов соответствующие им межгосударственные стандарты, сведения о которых приведены в дополнительном приложении ДА

6 ВЗАМЕН ГОСТ ISO/TS 22964-2013

Настоящий стандарт устанавливает горизонтальный метод обнаружения Cronobacter spp.

Настоящий стандарт распространяется на следующие объекты:

- пищевые продукты и ингредиенты, предназначенные для потребления человеком и кормления животных,

- образцы окружающей среды из зоны производства и переработки пищевых продуктов.

В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие международные стандарты [для датированных ссылок применяют только указанное издание ссылочного стандарта, для недатированных - последнее издание (включая все изменения)]:

ISO 6887 (all parts), Microbiology of the food chain - Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Подготовка проб для анализа, исходной суспензии и десятикратных разведений для микробиологических исследований)

ISO 7218, Microbiology of food and animal feeding stuffs - General requirements and guidance for microbiological examinations (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требования и рекомендации по микробиологическим исследованиям)

ISO 11133, Microbiology of food, animal feed and water - Preparation, production, storage and performance testing of culture media (Микробиология пищевых продуктов, кормов для животных и воды. Приготовление, производство, хранение и определение рабочих характеристик питательных сред)

В настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями:

3.1 Cronobacter spp.: Микроорганизмы, которые образуют типичные колонии на хромогенном агаре для выделения Cronobacter (CCI) [10] и проявляют характерные биохимические свойства, описанные при проведении испытаний в соответствии с настоящим стандартом.

3.2 обнаружение Cronobacter spp.: Определение Cronobacter spp. (3.1) в определенной массе или объеме продукта или на участке поверхности при проведении испытаний в соответствии с настоящим стандартом.

В настоящем стандарте применены следующие сокращения:

ЗПВ - забуференная пептонная вода;

CCI - хромогенная среда для выделения Cronobacter (Chromogenic Cronobacter Isolation);

CSB - Cronobacter селективный бульон (Cronobacter selective broth);

ТСА - триптон соевый агар.

Анализируемую навеску засевают в ЗПВ, инкубируют при температуре в диапазоне от 34 °C до 38 °C в течение (18 +/- 2) ч.

Примечание - Cronobacter spp. могут присутствовать в небольшом количестве совместно с другими бактериями семейства Enterobacteriaceae, в частности E. cloacae, которые могут препятствовать их обнаружению.

Селективную среду для обогащения засевают культурой, полученной по 5.1, и инкубируют при температуре (41,5 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

Для выделения делают пересев штрихом на хромогенный агар из обогащенной культуры, полученной по 5.2, и инкубируют при температуре (41,5 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

Отбирают типичные колонии с хромогенного агара, делают пересев до изолированных колоний на неселективном агаре, например ТСА, и проводят тесты для выявления биохимических признаков.

Приготовление питательных сред проводят в соответствии с ISO 7218 и ISO 11133.

Состав питательных сред и реагентов и их приготовление приведены в приложении B.

Определение рабочих характеристик питательных сред проводят в соответствии с ISO 11133 и/или приложением B.

Одноразовое оборудование является приемлемой альтернативой многоразовой стеклянной посуде, если оно имеет подходящие технические характеристики.

Используют лабораторное оборудование для микробиологических исследований согласно ISO 7218, в частности следующее.

7.1 Аппарат для сухой стерилизации (стерилизационный сушильный шкаф) или влажной стерилизации (автоклав) по ISO 7218.

7.2 Термостат, поддерживающий температуру в диапазоне от 34 °C до 38 °C, термостаты, поддерживающие температуру (37 +/- 1) °C и (41,5 +/- 1) °C.

7.3 Стерильные петли диаметром около 3 мм (объем 10 мм³), объемом 1 мм³ и иглы или петли для пересева.

7.4 pH-метр, имеющий точность калибровки +/- 0,1 единицы pH при температуре 25 °C.

7.5 Колбы и бутылки подходящей вместимости с крышками для приготовления и хранения питательных бульонов и агаров.

7.6 Стерильные градуированные пипетки или автоматические пипетки номинальной вместимостью 10 см³, 1 см³ и 0,1 см³.

7.7 Пробирки (с пробками или с колпачками) или флаконы для культивирования соответствующей вместимости с нетоксичными металлическими колпачками с вкладышами или одноразовыми пластиковыми колпачками (см. ISO 7218).

7.8 Чашки Петри, диаметром 90 мм.

7.9 Спектрофотометр, способный измерять поглощение света при длине волны 405 нм.

7.10 Пестики и ступки.

7.11 Холодильник, поддерживающий температуру (5 +/- 3) °C.

7.12 Водяные бани, поддерживающие температуру в диапазоне от 47 °C до 50 °C и (37 +/- 1) °C.

7.13 Сушильный шкаф (или печь, вентилируемая путем конвекции), поддерживающий температуру в диапазоне от 25 °C до 50 °C.

Отбор проб не является частью метода, изложенного в настоящем стандарте (см. конкретный международный стандарт, касающийся данного продукта).

Рекомендуемый метод отбора проб приведен в ISO/TS 17728 [3] для пищевых продуктов и кормов для животных, а также в ISO 18593 [4] для отбора проб с поверхностей.

Проба для проведения испытаний должна быть представительной, не поврежденной и не измененной в процессе транспортирования и временного хранения (см. ISO 7218).

Подготовку анализируемых проб из лабораторной пробы необходимо осуществлять в соответствии со стандартом, касающимся соответствующего продукта: см. ISO 6887 (все части).

В общем случае, для приготовления первичного разведения добавляют (10 +/- 0,1) г или (10 +/- 0,1) см³ анализируемого образца (раздел 9) к 90 см³ среды для предварительного обогащения (B.1) (ЗПВ), чтобы получить десятикратное разведение. Предварительно ЗПВ прогревают до комнатной температуры перед использованием. Для конкретных продуктов следуют процедурам, указанным в ISO 6887 (все части). Для сухого молока следуют ISO 6887-5.

Настоящий стандарт утвержден для навесок массой 10 г. Навески меньшей массы могут быть использованы без дополнительной валидации/верификации при условии, что сохраняется такое же соотношение между бульоном для предварительного обогащения и навеской. Навески большей массы, чем первоначально утвержденные, могут быть использованы, если при исследовании по валидации/верификации не было выявлено отрицательного влияния на обнаружение Cronobacter spp.

Примечания

1 Валидация может быть проведена согласно соответствующим протоколам, представленным в ISO 16140 (все части). Верификация для объединения образцов может проводиться в соответствии с протоколом, описанным в ISO 6887-1:2017, приложение D (протокол проверки для объединения образцов для качественных испытаний).

2 Большая масса анализируемого образца может отрицательно сказаться на восстановлении Cronobacter spp. в стрессовом состоянии, при наличии сопутствующей микрофлоры, например пробиотиков [5], [6].

При исследовании образцов массой более 10 г ЗПВ следует предварительно нагреть до температуры от 34 °C до 38 °C (7.2) перед внесением навески.

Инкубируют инокулированную среду для предварительного обогащения, приготовленную по 10.1 при температуре от 34 °C до 38 °C (7.2) в течение (18 +/- 2) ч.

После инкубации инокулированную среду предварительного обогащения хорошо перемешивают и переносят 0,1 см³ культуры, полученной по 10.2, в 10 см³ CSB-бульона (B.2) и тщательно перемешивают. Инкубируют при температуре (41,5 +/- 1) °C (7.2) в течение (24 +/- 2) ч.

Чашки с CCI-агаром (B.3) прогревают до комнатной температуры, если они хранились при более низкой температуре. При необходимости высушивают поверхность чашек (7.13) согласно процедуре, приведенной в ISO 11133.

Хорошо перемешивают обогащенную культуру и делают из нее пересев с помощью 10 мм³ петли (7.3) на поверхность CCI-агара (B.3), чтобы получить хорошо изолированные колонии. Инкубируют чашки при температуре (41,5 +/- 1) °C (7.2) в течение (24 +/- 2) ч.

После инкубации просматривают чашки с хромогенной средой на наличие типичных колоний презумптивных Cronobacter.

Типичные колонии Cronobacter на CCI-агаре образуют колонии небольшого или среднего размера (от 1 до 3 мм) и имеют цвет от синего до сине-зеленого. Нетипичные колонии часто белые или белые с зеленым центром, серые или черные. Некоторые естественно пигментированные колонии, не относящиеся к Cronobacter, могут выглядеть желтыми или красными.

Для подтверждения из селективной среды CCI (см. 10.4) делают пересев штрихом пяти отмеченных типичных или подозрительных колоний. В случае, если колонии плохо разделены, необходимо снова рассеять типичную колонию на селективный агар (B.3).

Если на чашке меньше пяти типичных или подозрительных колоний, отбирают все отмеченные колонии для подтверждения.

Для биохимического подтверждения используют чистые культуры.

Пересевают отобранные колонии штрихом на поверхность неселективного агара, например ТСА (B.4), чтобы получить хорошо изолированные колонии.

Чашки инкубируют в перевернутом виде при температуре от 34 °C до 38 °C (7.2) в течение (21 +/- 3) ч.

Если культуры на неселективном агаре перемешаны, пересевают подозрительную колонию на дополнительную чашку неселективного агара и инкубируют при температуре от 34 °C до 38 °C (7.2) в течение (21 +/- 3) ч, чтобы получить чистую культуру.

Допускается сначала протестировать наиболее характерную колонию, отобранную с чашки с селективным агаром. В случае положительного результата нет необходимости тестировать другие колонии. В случае отрицательного результата тестируют другие отобранные колонии до тех пор, пока не будет обнаружено отрицательного результата для всех колоний либо положительного результата.

Штаммы могут храниться на неселективном агаре при температуре (5 +/- 3) °C (7.11), но не более семи дней. Необходимо проводить пересевы колоний для получения свежей культуры перед выполнением подтверждающих тестов.

10.5.3.1 Общие положения

Проводят подтверждающие испытания, указанные в таблице 1.

Примечания

1 Допускается использование настольных тест-панелей для биохимической идентификации Cronobacter spp, если доказана их надежность (ISO 7218).

2 Допускается использование других альтернативных процедур для подтверждения принадлежности изолята к Cronobacter spp., при условии верификации пригодности альтернативной процедуры (ISO 7218).

10.5.3.2 Оксидаза

С использованием платино-иридиевой или пластиковой петли (7.3) берут часть хорошо изолированной колонии с каждой отдельной чашки (10.5.2) и наносят штрихом на фильтровальную бумагу, смоченную оксидазным реагентом (B.5.1); появление лилового, фиолетового или темно-синего цвета в течение 10 с свидетельствует о положительной реакции. Если используются коммерчески доступные наборы для оксидазного теста, следуют инструкциям изготовителя.

Типичные Cronobacter spp. оксидазоотрицательные.

10.5.3.3 Гидролиз 4-нитрофенил (PNP) субстрата

С использованием петли (7.3) суспендируют отдельную колонию, выращенную на неселективном агаре, например ТСА (10.5.2), в 2 см³ физиологического солевого раствора, 0,85% NaCl (B.5.2.4). Добавляют 2 см³ раствора для ферментативного анализа (B.5.2). Инкубируют на водяной бане при температуре (37 +/- 1) °C (7.12) в течение 4 ч и измеряют образование желтой окраски на спектрофотометре (7.9) при 405 нм. Минимальное поглощение 0,3 при 405 нм через 4 часа, что эквивалентно 16 мМ PNP, можно считать положительным.

Типичные Cronobacter spp. способны гидролизовать 4-нитрофенил .

10.5.3.4 L-лизиндекарбоксилаза

С использованием петли (7.3) пересевают каждую из выбранных колоний (10.5.2) в L-лизиндекарбоксилазную среду (B.5.3) ниже уровня поверхности среды. Инкубируют пробирки при температуре (37 +/- 1) °C (7.2) в течение (24 +/- 2) ч.

Фиолетовый цвет после инкубации свидетельствует о положительной реакции. Желтый цвет свидетельствует об отрицательной реакции.

Типичные Cronobacter spp. не способны декарбоксилировать L-лизин.

10.5.3.5 L-орнитиндекарбоксилаза

С использованием петли (7.3) пересевают каждую из выбранных колоний (10.5.2) в L-орнитиндекарбоксилазную среду (B.5.4) ниже уровня поверхности среды. Инкубируют пробирки при температуре (37 +/- 1) °C (7.2) в течение (24 +/- 2) ч.

Фиолетовый цвет после инкубации свидетельствует о положительной реакции. Желтый цвет свидетельствует об отрицательной реакции.

Большинство штаммов Cronobacter spp. способны декарбоксилировать L-орнитин.

10.5.3.6 Ферментация различных углеводов

С использованием петли (7.3) пересевают каждую из выбранных колоний в среду для определения ферментации углеводов (B.5.5) ниже уровня поверхности среды. Инкубируют пробирки при температуре (37 +/- 1) °C (7.2) в течение (48 +/- 2) ч.

Желтый цвет после инкубации свидетельствует о положительной реакции. Красный цвет свидетельствует об отрицательной реакции.

Типичные Cronobacter spp. способны вырабатывать кислоту из D-сахарозы и не способны вырабатывать кислоту из D-сорбита. Большинство штаммов Cronobacter spp. способны вырабатывать кислоту из и не способны вырабатывать кислоту из D-арабита.

10.5.3.7 Метиловый красный (MR) (дополнительно)

С использованием петли (7.3) пересевают каждую из выбранных колоний (10.5.2) в пробирку с бульоном MR-VP (B.5.6) ниже уровня поверхности среды. Инкубируют пробирки при температуре (37 +/- 1) °C (7.2) в течение (48 +/- 2) ч. Добавляют пять капель раствора метилового красного (B.5.6.2) в каждую пробирку. Четкий красный цвет свидетельствует о положительной реакции. Желтый цвет свидетельствует об отрицательной реакции.

Большинство штаммов Cronobacter spp. не дают положительную реакцию с метиловым красным.

10.5.3.8 Фогес-Праскауэр (VP) (дополнительно)

С использованием петли (7.3) пересевают каждую из выбранных колоний (10.5.2) в пробирку с бульоном MR-VP (B.5.6) ниже уровня поверхности среды. Инкубируют пробирки при температуре (37 +/- 1) °C (7.2) в течение (48 +/- 2) ч. Добавляют 0,2 см³ 40%-ного KOH (B.5.6.3.1) и 0,6 см³ раствора 1-нафтола (B.5.6.3.2). Оставляют на (1 +/- 0,5) ч. Эозиновый розовый цвет вокруг поверхности среды свидетельствует о положительной реакции.

Большинство штаммов Cronobacter spp. дают положительную реакцию Фогеса Проскауэра.

Cronobacter spp. оксидазоотрицательные, способны гидролизовать 4-нитрофенил и вырабатывать кислоту из сахарозы. Они не способны декарбоксилировать L-лизин и вырабатывать кислоту из D-сорбита. Очень немногие штаммы Cronobacter дают положительную реакцию с метиловым красным, также очень редкой является отрицательная реакция Фогеса Проскауэра. Cronobacter spp. можно отличить от близких представителей семейства Enterobacteriaceae по характеристикам, приведенным в приложении C.

Примечание - Определение термина Cronobacter spp. приведено в ссылках [9] и [11].

В соответствии с результатами биохимических испытаний и их интерпретацией приводят данные о наличии/отсутствии Cronobacter spp. в анализируемой навеске x г или x см³ продукта (см. ISO 7218).

Точность (воспроизводимость) метода была определена в межлабораторном исследовании путем определения специфичности, чувствительности и, по возможности, LOD₅₀ для этого метода. Данные приведены в приложении D. Значения, полученные при межлабораторном исследовании, могут быть неприменимы к типам пищевых продуктов, отличным от указанных в приложении D.

Чувствительность определяется как количество проб, признанных положительными, деленное на количество проб, испытанных при заданном уровне загрязнения. Таким образом, результаты зависят от уровня загрязнения образца.

Специфичность определяется как количество проб, признанных отрицательными, деленное на количество незараженных проанализированных образцов.

12.4 LOD₅₀ (Предел обнаружения 50% образцов)

LOD₅₀ - это концентрация (КОЕ/образец), для которой вероятность обнаружения составляет 50%.

В протоколе испытаний должна содержаться, как минимум, следующая информация:

a) используемый метод отбора проб, если он известен;

b) используемый метод испытаний со ссылкой на настоящий стандарт;

c) полученные результаты анализа;

d) все условия эксплуатации, не указанные в настоящем стандарте или рассматриваемые как дополнительные, совместно с подробной информацией о любых инцидентах, которые могли оказать влияние на результаты анализа;

e) вся информация, необходимая для полной идентификации образца.

Компоненты растворяют в воде, при необходимости нагревают. При необходимости устанавливают pH, чтобы после стерилизации он составлял (7,0 +/- 0,2) при температуре 25 °C.

Среду разливают в колбы (7.5) подходящей вместимости, чтобы получить порции, необходимые для анализа.

Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Среду хранят в закрытых колбах при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) до шести месяцев.

B.2 Cronobacter селективный бульон (CSB)

B.2.1.1 Состав

B.2.1.2 Приготовление

Каждый из компонентов растворяют в воде, при необходимости нагревают.

При необходимости устанавливают pH, чтобы после стерилизации он составлял (7,4 +/- 0,2) при температуре 25 °C. Разливают основу среды по 10 см³ в пробирки (7.7). Стерилизуют пробирки автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Среду хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более шести месяцев.

B.2.2.1 Состав

B.2.2.2 Приготовление

Растворяют ванкомицин в дистиллированной воде. Перемешивают и стерилизуют фильтрацией через фильтр с размером пор 0,2 мкм.

Раствор ванкомицина хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более 15 дней.

В асептических условиях добавляют 0,1 см³ раствора ванкомицина (B.2.2) к 10 см³ основы среды (B.2.1), чтобы конечная концентрация ванкомицина составила 10 мг на 1 дм³ CSB. Готовую среду CSB хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более одного дня.

B.3 Хромогенная среда для выделения Cronobacter (CCI)

Измельчают с хлористым натрием с использованием ступки и пестика (7.10), чтобы получить равномерно распределенный мелкий порошок . Остальные компоненты растворяют в воде при кипячении, прекращают нагрев и добавляют смесь хлористого натрия с . При необходимости устанавливают такой pH (7.4), чтобы после стерилизации он составил (7,3 +/- 0,2) при температуре 25 °C.

Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Охлаждают до температуры 47 °C - 50 °C. Разливают в стерильные пустые чашки Петри (7.8) примерно по 18 - 20 см³ CCI-агара и дают застыть на прохладной ровной поверхности. Среду хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более 14 дней.

Растворяют каждый из компонентов в воде при кипячении. При необходимости устанавливают такой pH (7.4), чтобы после стерилизации он составил (7,3 +/- 0,2) при температуре 25 °C. Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Охлаждают до температуры 47 °C - 50 °C. Разливают в стерильные пустые чашки Петри (7.8) примерно по 18 - 20 см³ ТСА, дают застыть на прохладной ровной поверхности. Среду хранят в соответствии с ISO 11133.

B.5.1.1 Состав

B.5.1.2 Приготовление

Растворяют компонент в воде непосредственно перед использованием.

B.5.2 Раствор для ферментативного анализа 

B.5.2.1 Фосфатный буфер, 0,3 М (pH 7,0)

B.5.2.1.1 Состав

B.5.2.1.2 Приготовление

Компоненты растворяют в стерильной воде и хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более 15 дней.

B.5.2.2 4-нитрофениловый субстрат

B.5.2.2.1 Состав

B.5.2.2.2 Приготовление

Компонент растворяют в воде при температуре 50 °C непосредственно перед использованием.

B.5.2.3 Готовая среда

Добавляют 10 см³ 4-нитрофенил субстрата (B.5.2.2) к 90 см³ фосфатного буфера (B.5.2.1), чтобы получить конечную концентрацию 4-нитрофенил 0,4 г на 100 см³ раствора для ферментативного анализа .

Готовый раствор для ферментативного анализа хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более одного дня.

B.5.2.4 Физиологический солевой раствор 0,85% NaCl.

B.5.2.4.1 Состав

B.5.2.4.2 Приготовление

Компонент растворяют в воде и хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более 15 дней.

B.5.3.1 Состав

B.5.3.2 Приготовление

Компоненты растворяют в воде, при необходимости нагревают. При необходимости устанавливают такой pH, чтобы после стерилизации он составил (6,8 +/- 0,2) при температуре 25 °C. Среду разливают по 5 см³ в пробирки (7.7).

Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Пробирки со средой хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более трех месяцев.

B.5.4.1 Состав

B.5.4.2 Приготовление

Компоненты растворяют в воде, при необходимости нагревают. При необходимости устанавливают такой pH, чтобы после стерилизации он составил (6,8 +/- 0,2) при температуре 25 °C. Среду разливают по 5 см³ в пробирки (7.7).

Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Пробирки со средой хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более трех месяцев.

B.5.5.1 Основа среды

B.5.5.1.1 Состав

B.5.5.1.2 Приготовление

Растворяют компоненты в воде, при необходимости нагревают. При необходимости устанавливают такой pH, чтобы после стерилизации он составил (6,8 +/- 0,2) при температуре 25 °C.

Разливают основу среды в колбы (7.5) подходящей вместимости. Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Среду хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более шести месяцев.

B.5.5.2 Раствор углеводов D-арабитола (C₅H₁₂O₅), (C₇H₁₄O₆), D-сорбита (C₆H₁₄O₆) и D-сахарозы (C₁₂H₂₂O₁₁) 80 мг/см³

B.5.5.2.1 Состав

B.5.5.2.2 Приготовление

Каждый из четырех углеводных компонентов отдельно растворяют в воде для получения четырех углеводных растворов. Стерилизуют все растворы путем фильтрации через фильтр с размером пор 0,2 мкм. Среду хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более шести месяцев.

B.5.5.3 Готовая среда для ферментации углеводов

B.5.5.3.1 Состав

B.5.5.3.2 Приготовление

Среды готовят отдельно для каждого углевода. В асептических условиях добавляют приготовленный раствор каждого из углеводов (B.5.5.2) к основе среды (B.5.5.1) и перемешивают. Разливают готовые среды для ферментации каждого углевода по 10 см³ в стерильные пробирки (7.7) в асептических условиях.

Готовые углеводные среды готовят в день использования.

B.5.6.1 MR/VP основа среды

B.5.6.1.1 Состав

B.5.6.1.2 Приготовление

Компоненты растворяют в воде, при необходимости нагревают. При необходимости устанавливают такой pH, чтобы после стерилизации он составил (6,9 +/- 0,2) при температуре 25 °C.

Разливают по 10 см³ в пробирки (7.7). Стерилизуют автоклавированием (7.1) при температуре 121 °C в течение 15 мин. Среду хранят при температуре (5 +/- 3) °C (7.11) не более шести месяцев.

B.5.6.2 Реагент метиловый красный (MR)

B.5.6.2.1 Состав

B.5.6.2.2 Приготовление

Растворяют метиловый красный в смеси этанола и воды. Стерилизация не требуется. Реагент хранят при комнатной температуре 20 °C - 25 °C.

B.5.6.3 Реагент Фогеса-Проскауэра (VP)

B.5.6.3.1 40%-ный раствор KOH

B.5.6.3.1.1 Состав

B.5.6.3.1.2 Приготовление

Растворяют компонент в воде. Стерилизация не требуется. Раствор хранят при комнатной температуре 20 °C - 25 °C.

B.5.6.3.2 5%-ный раствор 1-Нафтола

B.5.6.3.2.1 Состав

B.5.6.3.2.2 Приготовление

Растворяют 1-нафтол в этаноле. Стерилизация не требуется. Раствор хранят при комнатной температуре 20 °C - 25 °C.

Проверяют рабочие характеристики питательных сред и реагентов в соответствии с методами и критериями, описанными в ISO 11133, см. таблицу B.1.

Были проведены международные межлабораторные исследования с участием 14 - 17 сотрудников из девяти стран. В качестве матриц для валидации метода были использованы наиболее типичные виды пищевых продуктов, ингредиентов или образцов, исследованных на наличие Cronobacter spp.: смеси для детского питания на молочной основе; смеси для детского питания на соевой основе; лактоза; образцы крахмала и пробы окружающей среды. Каждый из образцов тестировался на двух разных уровнях загрязнения плюс отрицательный контроль. Исследование было организовано в 2013 году AINIA, Валенсия, Испания, в рамках мандата CEN M/381 от Европейской комиссии.

Межлабораторное исследование проводилось в соответствии с методикой, изложенной в настоящем стандарте. Для подтверждения колоний были использованы настольные тест-панели (ISO 7218). Значения рабочих характеристик, полученные в результате межлабораторных исследований, приведены по типам проб в таблицах D.1 - D.5. Данные, полученные некоторыми сотрудниками, были исключены из расчетов только на основании четко определенных технических причин (отклонений от протокола).

Уровень заражения, представленный в таблицах, соответствует определению количества бактерий в инокуляте методом посева на агар. В образцах, где был оценен LOD₅₀, размер инокулята, использованный для расчетов, представлял собой наиболее вероятное число (НВЧ), подсчитанное на искусственно зараженных образцах при низком уровне заражения.