Главная // Актуальные документы // Методические указания
СПРАВКА
Источник публикации
"Лабораторные исследования в ветеринарии: биохимические и микологические". Справочник. М.: Агропромиздат, 1991
Примечание к документу
Название документа
"Методические указания по лабораторной диагностике возбудителей дерматомикозов животных"
(утв. Минсельхозом СССР 18.03.1980)


"Методические указания по лабораторной диагностике возбудителей дерматомикозов животных"
(утв. Минсельхозом СССР 18.03.1980)


Содержание


Утверждены
Минсельхозом СССР
18 марта 1980 года
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКЕ
ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ДЕРМАТОМИКОЗОВ ЖИВОТНЫХ
1. Общие положения.
1.1. Дерматомикозы - группа заразных заболеваний кожи и волосяного покрова животных. Возбудители дерматомикозов животных относятся к родам Trichophyton и Microsporum. В зависимости от родовой принадлежности возбудителя заболевания подразделяют на трихофитию и микроспорию.
1.2. Диагностика возбудителей дерматомикозов животных предусматривает люминесцентный анализ патологического материала, микроскопию патологического материала, выделение чистой культуры возбудителя, определение вида возбудителя.
2. Отбор патологического материала от животных, больных дерматомикозами.
2.1. Патологический материал у больных животных берут с периферии очагов поражения, не подвергавшихся медикаментозному лечению.
2.2. Корочки с остатками волос, волосы выдергивают пинцетом из пораженных участков (по возможности менее загрязненных) и помещают в пробирки с ватными пробками или бумажные пакетики.
2.3. Образцы снабжают этикеткой с указанием области, района, хозяйства, возраста и степени поражения животного, а также даты взятия материала и высылают для исследования в лабораторию.
3. Люминесцентный анализ патологического материала.
3.1. Для люминесцентного анализа патологического материала используют ртутно-кварцевые лампы ПРК-2, ПРК-4, Л-80 и другие люминесцентные аппараты, оснащенные фильтром Вуда.
3.2. Материал просматривают через 10 - 15 мин после включения лампы, материал (волосы, кожные чешуйки), инфицированный возбудителем микроспории, дает характерное изумрудно-зеленое свечение. При трихофитии пораженные волосы не имеют такого свечения.
4. Микроскопия патологического материала.
4.1. Для микроскопического исследования патматериал помещают в стерильную чашку Петри, которую ставят на темный фон (черную бумагу).
4.2. С помощью препаровальной иглы и глазного скальпеля отбирают и отрезают утолщенные корневые части волос, покрытые белым налетом, и кожные чешуйки. Длина отрезков, подготовленных к микроскопии, 1 - 2 мм. Затем несколько отрезков волосков и чешуек (8 - 10) переносят на предметное стекло в каплю 10 - 15%-ного KOH или NaOH, слегка подогревают над пламенем горелки до появления белого ореола вокруг капли, после чего добавляют каплю 50%-ного водного раствора глицерина и препарат накрывают покровным стеклом. Микроскопируют с объективом x10, затем x40.
4.3. При микроскопии пораженных волос от животных, больных дерматомикозами, обнаруживаются чехол из артроспор вокруг волоса, артроспоры, расположенные в виде цепочек внутри волоса, или развитие мицелия вокруг и внутри волоса, в кожных чешуйках отмечается мицелий гриба и цепочки артроспор. Размер артроспор в патологическом материале от животных, больных трихофитией, составляет 2,5 - 7 мкм, в патологическом материале от животных, больных микроспорией, - 1,5 - 3,5 мкм.
4.4. Обнаружение грибных элементов в патологическом материале (артроспоры, мицелиальные нити) дает возможность поставить предварительный диагноз на трихофитию или микроскопию. Для точного определения вида возбудителя необходимо выделить грибы в чистой культуре.
5. Выделение чистой культуры возбудителя.
5.1. Для получения чистой культуры гриба и определения его вида проводят посевы корневых частей волос и кожных чешуек.
Посев делают на следующие питательные среды: сусло-агар и мясо-пептонно-глицериновый агар с 2% глюкозы (МПГА) - для выделения культур возбудителя от крупного рогатого скота, зебу, буйволов, овец, северных оленей; сусло-агар и агар Сабуро - для выделения культур от лошадей, пушных зверей, кроликов, морских свинок, мышевидных грызунов, кошек и собак.
При первичной изоляции дерматофитов с целью подавления роста сопутствующей микрофлоры к указанным средам можно добавлять антибиотики: пенициллин со стрептомицином (100 - 200 ЕД/мл) и актидион (циклогексимид) 0,1 - 0,5 мг/мл.
5.2. Пораженные частички волос и чешуйки кожи размером не более 2 мм переносят в стерильную чашку Петри, откуда берут отборочный материал для высева на питательные среды в пробирки. Посев производят микологической иглой. Предварительно иглу прокаливают над пламенем горелки и, слегка погружая в питательную среду, охлаждают ее. Затем иглой прикасаются к частичке волоса (чешуйке) и, соблюдая стерильность, переносят их по одному на поверхность косяка питательной среды. Волоски высевают в два-три участка поверхности агара на расстоянии 1 - 1,5 см друг от друга. На каждую экспертизу берут по 7 - 10 пробирок. Посевы выдерживают в термостате при температуре 28 °C до 30 дней.
5.3. В случае сильного загрязнения материала посторонней микрофлорой, быстро опережающей рост возбудителя, прибегают к обработке 70°-ным этиловым спиртом. При этом отобранные частички материала переносят в стерильную чашку Петри, заливают на 5 мин 15 мл спирта, затем спирт удаляют пипеткой и дважды промывают стерильной водой: наливают по 15 - 20 мл стерильной воды и отсасывают пипеткой. Волоски подсушивают в термостате при 37 °C и высевают на питательные среды. Обработанный спиртом патологический материал высевают на питательные среды без антибиотиков.
5.4. Появление роста колоний дерматофитов на месте посева пораженных волосков или кожных чешуек можно отметить на 3 - 5-й день. В отдельных случаях развитие возбудителя заметно только на 20-й день, в связи с чем наблюдения за посевами надо вести в течение месяца. Формирование колоний дерматофитов разных видов наступает в различные сроки - на 10 - 14-й день после начала роста для T. mentagrophytes, T. equinum, M. canis, equinum и на 20 - 25-й день для T. verrucosum. Описание культур следует проводить в этот период.
6. Определение вида возбудителя.
6.1. При определении вида возбудителя описывают культуральные признаки: размеры колоний, их структуру и цвет, строение растущего края, пигментацию обратной стороны колонии и питательной среды и проводят микроскопическое исследование культур, отмечая строение и ширину мицелия, форму и размеры микроконидий, макроконидий, хламидоспор и артроспор.
Для микроскопии культур готовят препараты: нагретой в пламени горелки и охлажденной микологической иглой или лопаточкой вырезают кусочек выросшей колонии гриба (при этом пробирку держат около пламени горелки), помещают его на предметное стекло в каплю 50%-ного водного раствора глицерина или воды и накрывают покровным стеклом, слегка раздавливая кусочек колонии. Микроскопируют препараты с объективом x10 и x40.
7. Характеристика культурально-морфологических признаков возбудителей дерматомикозов животных.
7.1. Trichophyton verrucosum (син. T. faviforme) (основной возбудитель дерматомикозов крупного и мелкого рогатого скота, зебу, буйволов, северных оленей). Культуры развиваются медленно, рост заметен на 5 - 7-й день.
Сусло-агар
МПГА
Культуральные признаки
К 20 - 25-му дню на питательных средах формируются колонии:
белые, сероватые или желтоватые, бархатистые, кожисто-бархатистые, кожистые, плоские или возвышенные, ровные или бугристые, неправильноскладчатые, растущий край ровный, дольчатый или лучистый, диаметр 5 - 8 мм
белые, бархатистые, плоские или возвышенные, гладкие или бугристые, растущий край дольчатый, диаметр 8 - 12 мм
Морфология
Мицелий ветвящийся, шириной 0,7 - 4 мкм
Мицелий ветвящийся, шириной 1 - 3 мкм
Микроконидии овальные, грушевидные, палочковидные, размером 1 - 3 x 2 - 8 мкм, немногочисленные
Микроконидии овальные, грушевидные, палочковидные, размером 1 - 3 x 2 - 8 мкм, немногочисленные или отсутствуют
Макроконидии неправильной формы, удлиненные, размером 3,5 - 8 x 20 - 50 мкм, немногочисленные или отсутствуют
Макроконидии отсутствуют
Артроспоры диаметром 3,5 - 8 мкм, немногочисленные или отсутствуют
Артроспоры диаметром 3,5 - 8 мкм, обильные или немногочисленные
Хламидоспоры диаметром 5 - 15 мкм
Хламидоспоры диаметром 5 - 15 мкм
7.2. Trichophyton mentagrophytes (син. T. gypseum) (основной возбудитель дерматомикозов пушных зверей, кроликов, морских свинок, мышевидных грызунов). Культуры развиваются быстро, рост заметен на 3 - 5-й день.
Сусло-агар
Агар Сабуро
Культуральные признаки
К 14-му дню на питательных средах формируются колонии:
белые, желтоватые, розоватые, плоские, ровные, мучнистые, зернистые или бархатистые, растущий край ровный или звездчатый, обратная сторона колонии желтоватая или красно-коричневая, колония покрывает всю поверхность косяка
белые, желтоватые, розоватые, плоские, ровные, бархатистые, мучнистые, обратная сторона колонии желтоватая или розоватая, колония покрывает всю поверхность косяка
Морфология
Мицелий ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 3 мкм, встречаются спиралевидные и кольцевидные окончания гиф
Мицелий ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 3 мкм, встречаются спиралевидные и кольцевидные окончания гиф
Микроконидии многочисленные, округлые, округло-овальные, диаметром 2 - 4 мкм
Микроконидии многочисленные, округлые, округло-овальные, диаметром 2 - 4 мкм
Макроконидии немногочисленные, цилиндрические с закругленными концами, булавовидные, удлиненно-овальные, размером 5 - 10 x 30 - 50 мкм
Макроконидии немногочисленные или отсутствуют, цилиндрические с закругленными концами, булавовидные, удлиненно-овальные, размером 5 - 10 x 30 - 50 мкм
Артроспоры отсутствуют
Артроспоры отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
7.3. Trichophyton equinum (основной возбудитель трихофитии лошадей). Культуры развиваются быстро, рост появляется на 3 - 5-й день.
Сусло-агар
Агар Сабуро
Культуральные признаки
К 14-му дню на питательных средах формируются колонии:
белые, бархатистые, плоские, гладкие или радиальнобороздчатые, обратная сторона колонии желтоватая, красноватая, зарастает вся поверхность косяка
белые, пушистые, плоские, обратная сторона желтоватая, розовая, диаметр колонии 10 - 15 мм, некоторые штаммы растут очень слабо
Морфология
Мицелий ветвящийся, шириной 1 - 3 мкм, редко встречаются спиралевидные и кольцевидные окончания гиф
Мицелий ветвящийся, шириной 1 - 3 мкм, редко встречаются спиралевидные и кольцевидные окончания гиф
Микроконидии многочисленные, овальные, грушевидные, размером 1 - 3 x 3 - 7 мкм
Микроконидии немногочисленные, овальные и грушевидные, размером 1 - 3 x 3 - 7 мкм
Макроконидии немногочисленные, удлиненно-овальные, булавовидные, с 1 - 4 перегородками, тонкостенные, размером 3 - 7 x 15 - 45 мкм
Макроконидии единичные или отсутствуют, удлиненно-овальные, булавовидные, тонкостенные, с 1 - 4 перегородками, размером 3 - 7 x 15 - 45 мкм
Артроспоры отсутствуют
Артроспоры отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
7.4. Microsporum canis (син. M. lanosum, M. felineum, основной возбудитель дерматомикозов кошек и собак). Культуры развиваются быстро, рост заметен на 3 - 5-й день.
Сусло-агар
Агар Сабуро
Культуральные признаки
К 14-му дню на питательных средах формируются колонии:
белые, сероватые или бежевые, пушистые, бархатистые, бархатисто-мучнистые, распростертые, растущий край паутинистый, зарастает весь косяк
белые, желтоватые, бежевые, пушистые, бархатистые, распростертые, растущий край паутинистый, зарастает весь косяк
Морфология
Мицелий ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 4 мкм, встречаются гифы из ракеткообразных клеток
Мицелий ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 4 мкм, встречаются гифы из ракеткообразных клеток
Микроконидии немногочисленные, овальные, грушевидные, размером 1 - 3 x 1,5 - 5 мкм
Микроконидии немногочисленные, овальные, грушевидные, размером 1 - 3 x 1,5 - 5 мкм
Макроконидии многочисленные, веретеновидной формы с вытянутыми концами, с толстостенной гладкой или зубчатой оболочкой, с 5 - 11 перегородками, размером 11 - 16 x 53 - 85 мкм
Макроконидии многочисленные, веретеновидной формы с вытянутыми концами, с толстостенной гладкой или зубчатой оболочкой, с 5 - 11 перегородками, размером 11 - 16 x 53 - 85 мкм
Артроспоры отсутствуют
Артроспоры отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
7.5. Microsporum equinum (возбудитель микроспории лошадей). Культуры развиваются быстро, рост заметен на 3 - 5-й день.
Сусло-агар
Агар Сабуро
Культуральные признаки
К 14-му дню на питательных средах формируются колонии:
серовато-коричневые, пленчатые или бархатистые, радиально-складчатые, растущий край паутинистый, ровный, зарастает вся поверхность косяка
беловато-желтоватые, пушистые, по краю паутинистые, обратная сторона желтоватого или коричневатого, красноватого цвета, зарастает вся поверхность косяка
Морфология
Мицелий ровный или неравномерно утолщенный, ветвящийся, шириной 1 - 5 мкм
Мицелий ровный или неравномерно утолщенный, ветвящийся, шириной 1 - 5 мкм
Микроконидии единичные или отсутствуют, грушевидные, размером 1 - 2 x 3 - 5 мкм
Микроконидии отсутствуют
Макроконидии немногочисленные или отсутствуют, овальные, веретеновидные, с 1 - 3 перегородками, размером 5 - 8 x 15 - 35 мкм
Макроконидии немногочисленные или отсутствуют, овальные, веретеновидные с 1 - 3 перегородками, размером 5 - 8 x 15 - 35 мкм
Артроспоры отсутствуют
Артроспоры отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
Хламидоспоры единичные или отсутствуют
7.6. Сравнительная культурально-морфологическая
характеристика основных возбудителей дерматомикозов
животных при развитии на сусло-агаре
Вид возбудителя
Культуральные признаки
Морфологические признаки
мицелий
микроконидии
макроконидии
артроспоры
T. verrucosum
Колонии медленнорастущие, белые, сероватые, желтоватые, гладкие или складчатые, возвышенные
Ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 4 мкм
Немногочисленные, овальные, грушевидные, 1 - 3 x 2 - 8 мкм
Немногочисленные, удлиненной неправильной формы, 3,5 - 8 x 20 - 50 мкм или отсутствуют
Немногочисленные, цепочками, 3,5 - 5 мкм в диаметре
T. mentagrophytes
Колонии быстрорастущие, белые, желтоватые, розоватые, мучнистые, распростертые
Ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 3 мкм, имеются спирали и завитки
Многочисленные, округлые, диаметром 2 - 4 мкм
Немногочисленные, булавовидные или цилиндрические, 5 - 10 x 30 - 50 мкм
Отсутствуют
T. equinum
Колонии быстрорастущие, белые, бархатистые, гладкие
Ровный, ветвящийся, шириной 1 - 3 мкм, имеются завитки
Многочисленные, овальные, грушевидные, 1 - 3 x 3 - 7 мкм
Немногочисленные, удлиненно-овальные, булавовидные, 3 - 7 x 15 - 45 мкм
То же
M. canis
Колонии быстрорастущие, белые, сероватые, бежевые, бархатистые, распростертые
Ровный, ветвящийся, шириной 0,7 - 5 мкм
Немногочисленные, овальные, грушевидные, 1 - 3 x 1,5 - 5 мкм
Многочисленные, веретеновидные, 11 - 16 x 53 - 85 мкм
"
M. equinum
Колонии быстрорастущие, серовато-коричневатые, кожистые, радиально-складчатые, распростертые
Ровный, ветвящийся или неравномерно утолщенный
Единичные грушевидные или отсутствуют, 1 - 2 x 3 - 5 мкм
Немногочисленные, овальные, веретеновидные, 5 - 8 x 15 - 35 мкм
"
8. Состав и приготовление питательных сред для культивирования дерматофитов
8.1. Сусло-агар. Неохмеленное пивное сусло, имеющее плотность 12 - 17% по сахарометру, получают на пивоваренном заводе. Разбавляют его водопроводной водой до плотности 7% по сахарометру, устанавливают pH до 8 - 8,2 добавлением 10%-ного NaOH. Разведенное сусло нагревают, не доводя до кипения, и растворяют в нем 2% агар-агара. Среду фильтруют через марлю (4 - 5 слоев), разливают в пробирки и другую стерильную посуду и стерилизуют в автоклаве 30 мин под давлением 0,5 атм. После стерилизации pH среды 6,4 - 6,7.
8.2. Агар Сабуро: глюкоза (мальтоза, декстроза) 40 г; пептон 10 г; агар-агар 20 г; вода водопроводная 1 л. В небольшом объеме воды растворяют глюкозу и пептон, доводят объем жидкости до 1 л, добавляют агар-агар и расплавляют его, нагревая среду, но не доводя до кипения. Питательную среду фильтруют через марлю (4 - 5 слоев), разливают в пробирки и другую посуду и стерилизуют в автоклаве под давлением 0,5 атм в течение 30 мин. После стерилизации pH среды 6,5 - 6,7.
8.3. Мясо-пептонно-глицериновый агар с 2% глюкозы (МПГА): глюкоза 20 г, глицерин 25, пептон 10, хлористый натрий 5 г; стерильная мясная вода (разбавленная дистиллированной водой 1 : 2) 1 л.
После растворения в мясной воде компонентов и расплавления агар-агара среду фильтруют через марлю (4 - 5 слоев), разливают в пробирки и другую посуду и стерилизуют в автоклаве под давлением 0,5 атм в течение 30 мин.