Контроль стерильности радиационно стерилизованного изделия следует проводить в условиях, исключающих возможность вторичной контаминации.

Работа проводится в настольных боксах, находящихся в боксированных помещениях (со шлюзами), в которых подачей стерильного воздуха создается повышенное давление, или в условиях настольных боксов с ламинарным потоком стерильного воздуха.

Работа должна выполняться квалифицированными микробиологами.

Из упаковки отбирают пробы, получившие в процессе радиационной стерилизации наименьшую дозу. Количество отбираемых проб определяется по формуле 0,4 умножить на корень квадратный из n, где n - количество изделий в одной партии при минимальном количестве проб - 3 и максимальном - 40. Одновременно отбирается удвоенное количество образцов для вторичного посева; эти образцы хранятся до получения результатов первичного посева; в случае стерильности первичных посевов удвоенное количество дубликатов направляется для реализации.

Для арбитражного хранения отбирают от каждой простерилизованной партии изделия в количестве 0,4 умножить на корень квадратный из n, но не более 40 изделий; эти образцы хранятся в течение срока годности данной продукции.

Должны удовлетворять положениям, изложенным в "Методических рекомендациях по контролю стерильности изделий медицинского назначения" (Приложение N 6 к приказу Минздрава СССР N 60 от 17.01.79).

4.1. При посеве материала для контроля стерильности возможно использование двух способов: непосредственная инкубация образца в жидкой питательной среде или посев смывной жидкости с образца.

4.2. Смыв производится только с рабочих поверхностей изделий. В качестве смывной жидкости используют стерильный физиологический раствор хлорида натрия с добавлением 0,1% твина-80. Объем смывной жидкости должен обеспечить полное извлечение микроорганизмов с контролируемой поверхности.

4.3. Смывную жидкость вносят частями в питательные среды. Смывную жидкость можно пропускать через мембранные фильтры (величина пор < = 0,22 мкм), которые помещают затем на поверхность плотной питательной среды фильтрующей стороной вверх.

4.4. В качестве питательных сред используются 1% сахарный бульон и агар Хоттингера, тиогликолевая среда (для выявления анаэробов) и среда Сабуро (для выявления грибов), а также рекомендованная специалистами стран - членов СЭВ универсальная питательная среда (взамен вышеуказанных питательных сред).

4.5. Посевы инкубируются в течение 14 дней при температуре 32 град. С, а на среде Сабуро при температуре 22 град. С.

5.1. По окончании инкубации посевов и отсутствии роста микроорганизмов во всех пробах делается заключение о стерильности испытуемой партии продукции.

5.2. При проросте посевов руководствуются следующими положениями.

5.2.1. Рост грамотрицательной микрофлоры, грибов, микобактерий, грамположительных неспорообразующих видов микроорганизмов (спорообразование проверяется согласно Госфармакопеи СССР 10-го издания, стр. 943) свидетельствует о вторичной контаминации испытуемых образцов при условии наличия данных дозиметрии об облучении продукции в установленной дозе. В этом случае делается заключение о стерильности данной партии продукции.

5.2.2. При росте стрептококков и спорообразующих видов бактерий производится повторный контроль стерильности удвоенного количества образцов данной партии. При повторном выявлении этих же микроорганизмов делается заключение о нестерильности партии продукции, а в случае отсутствия повторного роста этих микроорганизмов делается заключение о стерильности данной партии продукции.

5.2.3. Выявленные при повторном посеве микроорганизмы (п. 5.2.2.) направляются в Институт эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф.Гамалеи АМН СССР для определения их радиационной устойчивости. Институт эпидемиологии и микробиологии может поручить определение радиационной устойчивости микроорганизмов компетентным специалистам других учреждений, ведущих работы в области радиационной стерилизации медицинской продукции.