Диагноз на лептоспироз ставят по результатам бактериологического, серологического и гистологического методов исследований с учетом эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных и проведением дифференциальной диагностики.

Бактериологическая диагностика основана на обнаружении лептоспир в исследуемом материале путем микроскопии или выделения культуры и складывается из следующих этапов:

взятие патологического материала;

микроскопия в темном поле микроскопа;

выделение культур лептоспир посевом в специальные среды или биологической пробой на лабораторных животных;

идентификация и дифференциация выделенных культур.

1.1.1. Материалом для прижизненной диагностики служат кровь и моча, для посмертной - трупы мелких животных. От трупов крупных животных берут сердце, кусочки паренхиматозных органов, почку, транссудат из грудной и брюшной полостей, перикардиальную жидкость, мочевой пузырь с содержимым, спинномозговую жидкость.

Абортированный плод доставляют в лабораторию целиком или берут желудок с содержимым и паренхиматозные органы плода.

1.1.2. Мочу собирают при естественном мочеиспускании в чистые пробирки, закрепленные на проволоке, или в банки, чашки Петри, кружки и т.д. Легче всего ее брать после утреннего подъема животных, а у свиней - в любое время дня после 1 - 2-часового лежания. У коров и свиноматок мочу можно брать катетером.

1.1.3. Кровь в количестве 3 - 5 мл для бактериологического исследования берут в период лихорадки на 1 - 7-й день болезни, для серологического исследования берут 5 - 10 мл и не ранее чем через 5 - 7 дн. после проявления клинических признаков болезни или через 60 дн. после введения вакцины.

1.1.4. Почку извлекают в невскрытой капсуле. Сердце, мочевой пузырь и желудок плода берут с содержимым, для чего накладывают лигатуры на соответствующие сосуды и сфинктеры. Каждый орган или кусочек органа завертывают отдельно в пергамент.

1.1.5. Ликвор, транссудат, спинномозговую жидкость и другие жидкие субстраты насасывают стерильным шприцем или пипеткой в стерильные пробирки.

1.1.6. Воду из водоисточника для обнаружения лептоспир берут в объеме 1,5 - 2 л в стерильные колбы с ватно-марлевыми пробками.

1.1.7. Взятый материал помещают в ящик, опечатывают и направляют в лабораторию с нарочным.

1.1.8. Патологический материал должен быть взят и исследован в течение 6 ч в летнее время и 10 - 12 ч - при условии хранения его в охлажденном состоянии.

1.1.9. Микроскопия мочи должна быть закончена при температуре 30 - 40 °C в течение 3 ч, при 25 - 30 °C - 4 - 5 ч, при 20 - 25 °C - 6 - 8 ч, при 16 - 20 °C в течение 10 - 12 ч с момента взятия.

Вероятность обнаружения лептоспир в исследуемом материале в более поздние сроки не исключена, но значительно снижается.

1.1.10. Ветеринарный специалист, направляя материал в лабораторию для исследования на лептоспироз, должен рассчитывать, чтобы взятие материала, доставка в лабораторию и проведение исследования укладывались в сроки выживания лептоспир в патологическом материале, в противном случае ответ будет заведомо отрицательным.

В сопроводительной к патологическому материалу должно быть указано время гибели животного или время взятия пробы при жизни.

1.2.1. Для микроскопического исследования на лептоспироз необходимы:

биологический микроскоп (МБИ-3, МБИ-1, МВИ-11 и др.),

конденсор темного поля (ОИ-7, ОИ-13 и др.),

осветитель (ОИ-19, ОИ-21 и др.) с точечной лампой,

предметные стекла толщиной не более 0,8 - 1,1 мм,

покровные стекла стандартные.

Стекла, используемые для микроскопии, должны быть бесцветными, прозрачными, чистыми, без царапин и бликов.

1.2.2. Порядок микроскопии в темном поле следующий. Осветитель соединяют с микроскопом соединительной планкой. Передвигая лампочку осветителя, фокусируют свет на центре плоского зеркала микроскопа. При этом четко должны быть видны завитки спирали. Верхнюю линзу конденсора устанавливают на уровне предметного столика. Центрируют конденсор с помощью регулировочных винтов по оптической оси микроскопа. На верхней линзе конденсора при правильной установке виден равномерно освещенный круг.

Препарат для микроскопических исследований готовят по принципу раздавленной капли. Небольшой объем исследуемого материала наносят пипеткой или бактериологической петлей на предметное стекло и накрывают покровным стеклом, избегая образования пузырьков воздуха. На одном предметном стекле готовят три раздавленных капли.

На верхнюю линзу конденсора наносят каплю дистиллированной воды и устанавливают препарат для микроскопии. Пространство между линзой конденсора и предметным стеклом должно быть заполнено тонким слоем воды, без пузырьков воздуха, что уменьшает рассеивание световых лучей. Фокус конденсора должен находиться в плоскости препарата. Конденсор при этом обычно вплотную прилегает к стеклу. Иногда в зависимости от толщины препарата его приходится опускать на 0,5 - 1 мм.

Микроскопируют исследуемый материал при увеличении 40 x 7 - 10 и 20 x 1,1 x 7, а для более детального рассмотрения препарата - при увеличении 40 x 10 - 15 или 40 x 1,5 x 10.

1.3.1. Лептоспиры при рассмотрении в темном поле микроскопа представляют собой спиралеподобные тонкие серебристые нити, концы которых, оба или один, загнуты и булавовидно утолщены. Встречаются и бескрючковые формы лептоспир. Лептоспиры подвижны. В жидких средах обычными формами движения являются: вращательное, прямолинейное поступательное с одновременным вращением вокруг собственной оси и круговые. Одна и та же особь может совершать и вращательные, и поступательные движения.

1.3.2. Морфология и характер движения настолько типичны, что позволяют безошибочно распознавать лептоспир в патологическом материале. Кроме того, при микроскопии лептоспиры в отличие от других микроорганизмов никогда не бывают блестящими.

1.3.3. Возможность безошибочной дифференциации лептоспир от микроорганизмов других видов по морфологическим признакам дает право при лептоспирозе устанавливать диагноз только на основании микроскопических исследований, без последующего выделения чистых культур и их идентификации.

1.4.1. Мочу исследуют под микроскопом в нативном виде или после центрифугирования. Прозрачную мочу, не содержащую кристаллов солей, хлопьев, спермиев и других посторонних частиц, центрифугируют при 10 - 15 тыс. об/мин в течение 30 мин, сливают надосадочную жидкость, осадок ресуспендируют в оставшейся капле мочи и микроскопируют.

Мочу, содержащую значительное количество посторонних частиц, очищают центрифугированием при 3 тыс. об/мин в течение 10 мин, затем сливают надосадочную жидкость и центрифугируют ее для осаждения лептоспир при 10 - 15 тыс. об/мин в течение 30 мин.

При массовом исследовании животных в хозяйстве готовят по одной, а при наличии немногих животных - не менее трех раздавленных капель из каждой пробы мочи. Просматривают 50 и более полей зрения в каждой капле.

1.4.2. Лептоспир с активной подвижностью обнаруживают примерно в 50% положительных проб, в остальных случаях они неподвижны и довольно часто имеют измененную морфологию. Количество их также бывает различным. В моче примерно у 30% животных-лептоспироносителей содержатся по 1 - 2, реже по 5 - 7 и очень редко по 10 - 15 лептоспир в каждом поле зрения, в 30 - 35% случаев удается обнаружить 1 - 2 лептоспиры в 5 - 10 полях. В остальных случаях выявляют 1 - 2 лептоспиры в 20 - 50 и более полях зрения.

В кислой моче с pH 5,0 - 6,0 лептоспиры быстро утрачивают подвижность и погибают. Некоторые мертвые клетки сохраняют форму, типичную для лептоспир, но в них по длине тела бывает видна зернистость, довольно часто концевые крючки распрямлены.

1.5.1. Кровь, взятую от больного или подозреваемого в заболевании животного, смешивают с двойным количеством 1,5%-ного раствора лимоннокислого натрия, центрифугируют при 2 - 3 тыс. об/мин в течение 5 мин или отстаивают в течение часа, микроскопируют прозрачный надосадочный слой жидкости. Целесообразно осаждение лептоспир из надосадочной жидкости проводить центрифугированием при 10 - 15 тыс. об/мин в течение 30 мин.

1.6.1. При бессимптомном течении лептоспироза суспензию готовят из кусочков коркового слоя почки, а при остром течении - из почки и печени. У абортированного плода микроскопируют суспензию из всех органов.

1.6.2. Кусочки исследуемого органа массой 2 - 3 г растирают в ступке с 5 - 7 мл питательной среды, физиологического раствора или стерильной воды до получения гомогенной взвеси. Суспензию отстаивают в холодильнике 1 - 2 ч или центрифугируют при 3 тыс. об/мин в течение 10 мин и микроскопируют надосадочную жидкость.

1.6.3. Транссудат из грудной и брюшной полостей, околосердечную жидкость, содержимое желудка плода и другие жидкие субстраты микроскопируют по той же методике, что и мочу.

1.6.4. Из проб крови и суспензии каждого органа готовят не менее трех раздавленных капель и просматривают в каждой из них не менее 50 полей зрения.

1.7.1. При микроскопической диагностике лептоспиры необходимо дифференцировать от нитей фибрина, обломков хвостовых частей спермиев, разрушенных эритроцитов, спирале- и вибриоподобных микроорганизмов, интерспир у хряков и других микроорганизмов.

1.7.2. Спермии постоянно содержатся в моче быков и хряков и часто в большом количестве. Обломки их хвостовых частей не имеют концевых крючков, неподвижны и вследствие преломления света кажутся блестящими.

1.7.3. Нити фибрина постоянно обнаруживают в крови, транссудате и иногда в моче. Они не преломляют свет, но не имеют концевых крючков и не обладают подвижностью.

1.7.4. Содержимое эритроцитов может выдавливаться через поры мембраны в виде тонких нитей. Такой эритроцит очень напоминает "паучок" из агглютинированных лептоспир. Свободный конец каждой нити под действием тока жидкости непрерывно извивается и колеблется. Часть нитей отрывается от эритроцитов и очень напоминает по форме и размерам лептоспир, но в отличие от последних они тоньше, не имеют крючков и не способны самостоятельно двигаться.

1.7.5. Спирилло- и вибриоподобные микроорганизмы обнаруживают в 10 - 15% случаев в моче свиней и крупного рогатого скота и постоянно в крови, спинномозговой жидкости, суспензии из органов, а также в тканях и жидкостях абортированных плодов. Эти микроорганизмы отличаются от лептоспир змееподобным движением и отсутствием концевых крючков.

1.7.6. Интерспиры обитают в препуциальном мешке свиней. В моче, взятой при естественном мочеиспускании, их обнаруживают повсеместно в 50 - 80% случаев. В моче, взятой из мочевого пузыря, они не содержатся. Интерспиры подвижны. Оба или один конец микробной клетки перемещается судорожными, маятникообразными, с широкой амплитудой движениями. После нескольких колебательных движений клетка некоторое время остается неподвижной, а затем снова можно наблюдать несколько очередных движений. Подвижность сохраняется не более 1 - 2 ч с момента получения мочи. Неподвижная интерспира имеет, так же как и лептоспира, один или два крючка и не преломляет свет, но в отличие от лептоспир у нее видны первичные завитки и тело клетки напоминает нить, состоящую из бусинок. Концы крючков заострены.

1.7.7. Другие микроорганизмы дифференцируют от лептоспир по форме и характеру движения, и все они, кроме того, преломляют свет и кажутся блестящими.

1.8.1. Выделение лептоспир из крови при жизни возможно в первые 5 - 7 дн. болезни в период лихорадки. Для этой цели кровь из яремной или ушной вены вносят через стерильную иглу по 3 - 5 капель в 5 - 7 пробирок с питательной средой или высевы делают из пробы крови, присланной в лабораторию (приложение 2 и 3).

1.8.2. От трупа при диагностическом убое высевают пастеровской пипеткой кровь из сердца, ткани печени и почки, а от абортированного плода, кроме того, и из содержимого желудка. При убое клинически здоровых животных высевы делают из почки и мочевого пузыря. Материалом из каждого органа засевают 3 - 5 пробирок с питательной средой.

1.8.3. Для выделения культур из почки ее освобождают от капсулы, поверхность прижигают шпателем или горящим спиртовым тампоном, пипетку вводят параллельно поверхности в корковый слой. Высев делают у крупного рогатого скота из 2 - 3 долей почки, у свиней - из нескольких участков почки.

1.8.4. Высевы из других органов делают по общепринятой методике.

Мочу, ликвор, околосердечный или брюшной транссудат и другие жидкие биосубстраты засевают по 1 - 3 капли в 3 - 5 пробирок с питательной средой.

1.8.5. Посевы культивируют при температуре 28 - 30 °C в течение трех месяцев. Лептоспиры, размножаясь в питательной среде, не изменяют ее внешнего вида. Поэтому для выявления роста лептоспир через 3, 5, 7, 10 и далее через каждые 5 дн. культивирования из всех пробирок микроскопируют капли, которые наносят на предметное стекло бактериологической петлей. Большинство культур вырастает через 7 - 20 дн. Иногда лептоспиры обнаруживают в среде на 3 - 5-й день, через 1 - 2 мес и очень редко через 2 - 3 мес культивирования.

Содержимое каждой пробирки, в которой обнаружены лептоспиры, пересевают в 3 - 5 пробирок со свежей питательной средой. Пробирки с обильным ростом посторонней микрофлоры уничтожают.

1.9.1. Пересевы культур лептоспир проводят пастеровскими пипетками. В пробирку с 5 - 10 мл питательной среды вносят 0,5 - 1,0 мл культуры. Максимальное накопление лептоспир наблюдается через 4 - 7 дн. культивирования при температуре 28 - 30 °C.

1.9.2. Рост и чистоту культуры лептоспир в жидких питательных средах контролируют микроскопически в темном поле микроскопа и макроскопически - просмотром пробирок с культурами в луче света от осветителя. При этом после встряхивания в питательной среде четко просматриваются муаровые волны, образуемые выросшей культурой.

Культуру лептоспир пересевают через каждые 10 - 15 дн. не менее чем в 3 - 4 пробирки.

1.9.3. Штаммы лептоспир, постоянно поддерживаемые в лаборатории, можно хранить в пробирках под вазелиновым маслом, в запаянных ампулах, в морозильной камере при минус 70 - 80 °C или при температуре жидкого азота (-190 °C). Лептоспиры консервируют любым из этих методов после выращивания в сывороточной среде до максимального накопления.

В пробирку на культуру наслаивают 1 - 1,5 мл стерильного вазелинового масла или культуру расфасовывают по 1 - 5 мл в стерильные ампулы из нейтрального стекла и запаивают.

Хранят пробирки и ампулы в темном месте при комнатной температуре. В таких условиях лептоспиры можно хранить без пересевов в течение 3 мес.

1.9.4. Для хранения в замороженном состоянии культуры расфасовывают в ампулы, запаивают, охлаждают до 0 - 4 °C и помещают в сосуды Дьюара, заполненные азотом, или морозильную камеру.

В жидком азоте лептоспиры можно хранить без пересевов в течение года, при этом они заметно не изменяют своих биологических свойств.

1.10.1. Культуры лептоспир, загрязненные микрофлорой, очищают биологическим методом, фильтрацией через бактерийные фильтры или пересевом на плотные питательные среды.

1.10.2. Для очистки биологическим методом загрязненную культуру вводят внутрибрюшинно морским свинкам в дозе 1 - 2 мл, крольчонку - 1 - 2 мл, хомяку или мыши - 0,5 мл. Через 30 - 60 мин кровь из сердца зараженного животного высевают в пробирки с питательной средой.

1.10.3. Лептоспиры проходят через асбестовые фильтровальные пластины марки СФ и свечи Шамберлана Л-5. Для очистки методом фильтрации загрязненную культуру фильтруют через простерилизованный фильтр. Фильтрат рассевают в 5 - 10 пробирок с питательной средой. В высевах из фильтрата получают чистую культуру лептоспир.

1.11.1. Восприимчивы к лептоспирозу при экспериментальном заражении золотистые хомяки, крольчата, морские свинки, крапчатые суслики, щенки собак, котята, белые и серые мыши.

Для повседневной практической работы используют золотистых хомяков 20 - 30-дневного возраста и крольчат-сосунов в возрасте 10 - 20 дн.

Молодые свинки (3 - 5-недельного возраста) массой 150 - 200 г наиболее чувствительны к L. icterohaemorrhagiae, в меньшей степени - L. pomona и малочувствительны к лептоспирам других серологических групп.

1.11.2. Лабораторных животных заражают для выделения культур лептоспир из патологического материала и объектов внешней среды, очистки культур лептоспир от посторонней микрофлоры, определения вирулентности выделенных культур и дифференциации от сапрофитов.

1.11.3. Для выделения культур лептоспир животных заражают кровью, мочой, суспензией из паренхиматозных органов животных (абортированного плода) или спермой.

Исследуемый материал вводят подкожно или внутрибрюшинно хомякам от 0,3 - 0,5 до 1 мл, крольчатам - 2 - 3 мл.

1.11.4. На каждую пробу исследуемого материала необходимо брать по два зверька: одного из них убивают на 4 - 5-й, другого, если он не погибает, - на 14 - 16-й день после заражения. Кровь зверька, убитого на 14 - 16-й день после заражения, исследуют в реакции микроагглютинации, начиная с разведения 1:10 с лептоспирами 13 серологических групп. Положительная РМА свидетельствует о наличии лептоспир в исследуемом материале.

1.11.5. Высевы от убитых и павших зверьков делают из сердца, печени и почки в 2 - 3 пробирки из каждого органа. Вторую почку, кусочки печени, транссудат из грудной и брюшной полостей, околосердечную жидкость и содержимое мочевого пузыря микроскопируют.

1.11.6. Культуры лептоспир чаще удается выделить из органов зверька в период проявления клинических признаков болезни, проявляющихся отказом от корма, вялостью, дрожью, взъерошенностью шерсти, конъюнктивитом, желтушностью видимых слизистых оболочек и т.д.

1.11.7. У крольчат и морских свинок проводят после заражения термометрию. У крольчат нормальной считается температура 38,5 - 39,5 °C, у свинок - 38 - 39,5 °C. В период лихорадки кровь берут из уха или сердца шприцем для микроскопии и посева.

1.11.8. Патогенность и вирулентность выделенных культур лептоспир проверяют на золотистых хомяках или крольчатах. Патогенные лептоспиры способны размножаться в организме животного, вызывать клинические проявления болезни, характерные патологоанатомические изменения и гибель животного. Лептоспиры-сапрофиты такими свойствами не обладают. Заражение животных проводят внутрибрюшинно 5 - 7-дневной культурой, содержащей 70 - 100 лептоспир в поле зрения микроскопа. Культуры лептоспир, убивающие золотистых хомяков на 5 - 12-й день дозой менее 0,1 мл, считают высоковирулентными, 0,2 - 0,4 мл - средней вирулентности и 0,5 - 1 мл - слабовирулентными.

1.11.9. Определение серогрупповой принадлежности культур лептоспир проводят в соответствии с "Методическими указаниями по применению групповых агглютинирующих лептоспирозных сывороток", утвержденными Главным управлением ветеринарии Минсельхоза СССР 17 июля 1980 г.

1.11.10. В качестве биологической модели для обнаружения лептоспир могут быть использованы взрослые кролики и морские свинки. Кровь животных исследуют по РМА на наличие специфических антител. Животных, в крови которых не обнаружены специфические антитела, заражают исследуемым материалом.

Кровь зараженных животных исследуют 3 раза через каждые 7 дней, начиная с разведения 1:10 по реакции микроагглютинации с лептоспирами 13 серологических групп. Обнаружение в крови зараженных животных специфических антител свидетельствует о наличии лептоспир в исследуемом материале и позволяет ориентировочно судить об их серогрупповой принадлежности.

2.1. Вода является основным фактором в передаче возбудителя лептоспироза.

Лептоспир обнаруживают в воде биологической пробой на крольчатах, свинках, хомяках, крапчатых сусликах, взрослых кроликах, используя одну из следующих методик.

2.2. Пробы воды объемом 1 - 2 л берут в стерильную посуду, прогревают до 30 °C и выливают в эмалированный кювет, помещают в него на 1 ч двух подопытных животных, кожа брюшка или задних ног которых скарифицирована, так, чтобы скарифицированная поверхность была погружена в воду. Начиная с 4-го дня у крупных зверьков (крольчата, морские свинки) берут кровь из сердца с целью выделения гемокультур, исследуют микроскопически брюшной экссудат. Одного из мелких зверьков убивают. На 14 - 20-й день всех выживших животных также убивают. Патологический материал исследуют на наличие лептоспир. Кровь исследуют в РМА.

2.3. Пробу воды (до 500 мл) центрифугируют при 10 - 15 тыс. об/мин в течение 30 мин, сливают надосадочную жидкость, осадки из всех центрифужных стаканов суспендируют в стерильной питательной среде для лептоспир или физиологическом растворе. Суспензию вводят внутрибрюшинно или подкожно хомякам по 0,5 - 1 мл, крольчатам и морским свинкам - по 1 - 2 мл. В дальнейшем исследуют, как указано в п. 2.2.

2.4. Полученный после центрифугирования осадок подкожно вводят в дозе 2 - 3 мл взрослым кроликам, не имеющим в крови лептоспирозных антител.

Через 7 - 14 и 20 дн. кровь кролика исследуют по РМА с лептоспирами 13 серологических групп. Обнаружение специфических антител в титре 1:10 и выше свидетельствует о наличии лептоспир в исследуемой пробе воды.

3.1. Материалом для гистологического исследования служат кусочки коркового слоя почек и печени толщиной не более 1 см, консервированные 10%-ным раствором формалина.

Лептоспиры удается обнаружить с наибольшим постоянством в гистологических срезах, импрегнированных серебром по Левадити. Методы Крантца, Полагута и Майера менее эффективны.

3.2. Несколько кусочков органов не толще 1 см, лучше 2 - 3 мм, фиксируют в 10%-ном водном растворе нейтрального формалина 24 - 48 ч. После фиксации кусочки переносят в 96°-ный спирт на 24 ч. Промывают в дистиллированной воде до тех пор, пока кусочки не осядут на дно бюкса (не менее 2 - 3 ч), воду меняют три раза.

3.3. Помещают кусочки в 1 - 3%-ный раствор азотнокислого серебра на 3 - 6 дн. Процесс серебрения ведут при температуре 37 °C. Раствор азотнокислого серебра готовят на свежей дистиллированной воде из расчета 15 мл раствора на один кусочек.

3.4. Прополаскивают в дистиллированной воде в течение 2 - 5 мин. После промывки кусочки переносят в небольшую порцию редуцирующей смеси в отдельной чашечке на 2 мин (раствор быстро темнеет) и затем помещают их в приготовленный перед употреблением основной редуцирующий раствор следующего состава: пирогалловая кислота - 4 г, дистиллированная вода - 100 мл, формалин чистый - 5 мл.

Раствор готовят из расчета 20 - 25 мл на один кусочек ткани. Восстановление обязательно проводят в банке из темного стекла.

3.5. Кусочки выдерживают в редуцирующей смеси 24 - 48 ч при комнатной температуре в темном месте или в банке из темного стекла.

Время выдержки контролируют приготовлением единичных срезов через каждые 12 - 16 ч во избежание передержания, так как срезы могут стать черными. Промывают в дистиллированной воде 1 - 2 ч.

3.6. Обрабатывают препараты последовательно спиртами: 96°-ным (спирт 1) сутки, 96°-ным (спирт 2) сутки, 96°-ным (спирт 3) - сутки; спиртметилом (спирты этиловый и метилсалициловый поровну) - до опускания кусочков на дно бюкса, а затем метилсалициловым - до утра.

3.7. После этого перекладывают в парафиновую кашу (ксилол и парафин поровну) на 30 мин при 57 °C; парафин 1 - на 60 мин при 57 °C; парафин 2 - на 60 мин при 57 °C.

Из быстро остуженного парафина вырезают блок с кусочком органа и наклеивают на деревянный кубик. Приготавливают тонкие срезы на санном микротоме и наклеивают на предметное стекло, депарафинируют в трех бюксах с ксилолом по 10 - 15 мин в каждом и заключают под покровное стекло в канадский бальзам, подсушивают и просматривают под микроскопом со светлопольным конденсором при увеличении 90 x 7 - 10.

В случае неудовлетворительных результатов импрегнации лептоспир готовят препараты из других одновременно приготовленных блоков. Препараты необходимо хранить в темноте.

3.8. Микрокартина: лептоспиры черные, окружающая ткань буровато-желтая. Лептоспиры располагаются на поверхности эпителия и в просветах мочевых канальцев почек, несколько реже - в цитоплазме эпителия, преимущественно группами. После импрегнации серебром типичные лептоспиры имеют S-образную с 1 - 2 изгибами или змеевидную форму с грубыми, толстыми завитками, которые в отдельных случаях слабозаметны. Иногда в просвете и на поверхности эпителия мочевых канальцев встречаются аргирофильные гранулы (окрашены в цвет лептоспир), которые при отсутствии типичных форм нельзя принимать за лептоспир.

4.1. Серологическая диагностика лептоспироза основана на обнаружении специфических антител в крови животных реакцией микроагглютинации (РМА) или реакцией макроагглютинации (РА).

Сыворотку крови животных исследуют на лептоспироз по РМА или РА для выяснения благополучия хозяйства по этому заболеванию и установления диагноза на лептоспироз у отдельных животных. В последнем случае проводят 2 - 3-кратное исследование. Кровь берут для исследования на 5 - 7-й день болезни и повторно через 7 - 10 дн.

4.1. Порядок постановки и учета реакции микроагглютинации (РМА)

4.1.1. Для постановки реакции микроагглютинации необходимы:

исследуемая сыворотка крови животных;

антигены - культуры диагностических штаммов лептоспир;

электролит - физиологический раствор;

микроскоп, конденсор темного поля и осветитель те же, что для микроскопической диагностики;

агглютинационные пластинки или пробирки Флоринского;

40 - 100-гнездные штативы;

бактериологические пробирки;

градуированные пипетки на 1, 2, 5 и 10 мл;

аппарат Флоринского;

предметные стекла.

4.1.2. Исследуемая сыворотка. Для исследования пригодна сыворотка свежая, замороженная, высушенная на фильтровальной бумаге, консервированная фенолом или борной кислотой. Консервируют отстоявшуюся сыворотку, слитую в сухие стерильные пробирки. Добавляют 5%-ный раствор фенола при постоянном помешивании 0,05 мл (1 капля) на 1 мл сыворотки.

Борную кислоту вносят в сыворотку до получения насыщенного раствора и образования на дне пробирки небольшого осадка кристаллов. Кристаллы кислоты не должны попадать в пипетку во время постановки реакции.

Высушивают сыворотку на квадратах (5 x 5 см) белой фильтровальной бумаги по 3 - 5 капель (0,05 мл каждая) при комнатной температуре или в термостате при температуре 37 °C. Консервированные пробы сыворотки пригодны для исследования в течение месяца.

Гемолизированные, загнившие, плесневелые и проросшие сыворотки не исследуют.

4.1.3. Антигены. В качестве антигенов в РМА используют живые культуры лептоспир. Республиканские ветеринарные лаборатории исследуют сыворотку крови домашних животных с лептоспирами 13 серологических групп.

Краевые, областные, межрайонные и районные ветеринарные лаборатории ставят реакцию с лептоспирами 6 серогрупп:

Сыворотку диких животных исследуют с лептоспирами, рекомендованными для республиканских ветеринарных лабораторий, и дополнительно с лептоспирами 3 серогрупп:

Рекомендованные штаммы лептоспир ветеринарные лаборатории получают во Всесоюзном государственном научно-контрольном институте ветеринарных препаратов Министерства сельского хозяйства СССР и поддерживают их периодическими пересевами через каждые 10 - 15 дн.

Пригодность культуры для использования в реакции оценивают путем просмотра пробирок в проходящем свете и микроскопией.

При достаточном накоплении лептоспир после встряхивания пробирки с культурой в проходящем свете в среде хорошо заметны муаровые волны, а в спокойном состоянии - легкая опалесценция. Наличие осадка, пленки, помутнение среды свидетельствуют о прорастании культуры посторонней микрофлорой, полная прозрачность среды - об отсутствии лептоспир.

В реакции используют чистые культуры лептоспир в возрасте 5 - 15 дн. без признаков агглютинации и лизиса (четкообразные, неподвижные клетки) с накоплением 70 - 100 микробных клеток в поле зрения микроскопа при увеличении 20 x 10 x 15 или 40 x 7 - 10. Культуры, содержащие 150 - 200 и более лептоспир в поле зрения микроскопа, разводят перед постановкой реакции питательной средой или физиологическим раствором до указанной концентрации.

Через каждые 3 мес лаборатории проводят контроль диагностических штаммов лептоспир в реакции микроагглютинации и лизиса с групповыми агглютинирующими сыворотками.

В ответах о результатах исследования и при составлении отчетов лаборатория указывает серогруппу лептоспир, с которой реагировала сыворотка, а не серовар или штамм.

4.1.4. Электролит. В качестве электролита в реакции микроагглютинации используют 0,85%-ный раствор хлористого натрия (марки х.ч. или ч.д.а) в дистиллированной воде. Раствор разливают во флаконы по 100 - 200 мл или бактериологические пробирки, стерилизуют в автоклаве при 1 атм 30 мин.

4.1.5. Сыворотку исследуют в трех разведениях: 1:100, 1:500, 1:2500, порядок приготовления которых показан ниже.

При необходимости реакцию ставят в разведениях 1:100, 1:200, 1:400, 1:800 и т.д. до титра.

4.1.6. При исследовании сыворотки, высушенной на фильтровальной бумаге, вырезают две сухие капли (0,1 мл сыворотки), измельчают ножницами и заливают в пробирке физиологическим раствором в объеме 4,9 мл, экстрагируют в течение часа при температуре 37 °C.

Полученный экстракт используют как исходное разведение сыворотки 1:50.

4.1.7. Реакцию ставят на агглютинационных пластинках. Разведенную сыворотку разливают начиная с большего разведения в лунки агглютинационных пластин по 0,1 мл в каждую мерной пипеткой на 1,0 мл или аппаратом Флоринского. Каждое разведение сыворотки разливают в отдельный ряд, состоящий из 5 - 13 лунок (пробирок), в зависимости от количества антигенов, используемых в реакции. Каждую культуру-антиген вносят по 0,1 мл в 3 лунки с разными разведениями сыворотки. После добавления антигенов пластины встряхивают и выдерживают в термостате при температуре 30 °C в течение часа.

Контролем служит смесь культуры лептоспир с физиологическим раствором по 0,1 мл. Лептоспиры в контроле должны оставаться подвижными, не иметь признаков лизиса и агглютинации.

4.1.8. Реакцию учитывают путем микроскопии капель из каждой лунки в темном поле микроскопа при увеличении 20 x 10 или 20 x 7 x 1,5. Капли из лунок выносят на предметное стекло бактериологической петлей от большего разведения к меньшему и просматривают их без покровного стекла. Капли можно наносить двумя способами: 1) бактериологической петлей диаметром 3 мм наносят на стекло сразу до 30 капель и затем просматривают их под микроскопом, 2) бактериологической петлей диаметром 1 мм наносят на предметное стекло в освещенный центр поля зрения одну каплю и просматривают ее, передвигают столик на 2 - 3 мм, и рядом с первой наносят и учитывают вторую каплю. В этом случае на предметном стекле учитывают 60 - 80 капель.

После каждого антигена петлю прокаливают и охлаждают.

4.1.9. Результаты реакции оценивают в крестах по четырехбалльной системе:

(++++) - агглютинированы 100% лептоспир;

(+++) - агглютинированы 75% лептоспир;

(++) - агглютинированы 50% лептоспир;

(+) - агглютинированы 25% лептоспир;

(-) - агглютинация отсутствует.

Агглютинация проявляется в склеивании лептоспир и образовании "паучков". "Паучок" включает от 3 - 5 до нескольких десятков и даже сотен лептоспир. Свободные концы лептоспир сохраняют подвижность.

В начальных разведениях сыворотки может наблюдаться лизис лептоспир, проявляющийся в набухании и обездвиживании, появлении зернистости и полного распада микробных клеток.

4.1.10. Положительной считают реакцию, оцененную не менее чем на два креста при отсутствии агглютинации в контроле.

При повторном исследовании сыворотки крови реакцию ставят в тех же разведениях.

4.2. Порядок постановки и учета реакции макроагглютинации (РА)

Реакцию макроагглютинации ставят и учитывают в соответствии с "Временным наставлением по применению антигенов для диагностики лептоспироза у животных реакцией макроагглютинации", утвержденным Главным управлением ветеринарии Минсельхоза СССР 12 мая 1974 г.

4.3. Оценка показаний РМА и РА

4.3.1. Животных с титром сыворотки в РМА 1:100 или реагирующих по РА на 1 - 2 креста, кроме лошадей и крупного рогатого скота, реагирующих с лептоспирами группы Hebdomadis, считают подозреваемыми в заражении.

Крупный рогатый скот, реагирующий с лептоспирами группы Hebdomadis, и лошадей, реагирующих с лептоспирами любой серологической группы, считают подозреваемыми в заражении при титре антител в РМА 1:500 или реагирующих в РА на 1 - 2 креста с неразведенной сывороткой.

Кровь от животных, подозреваемых в заражении, и от животных, не реагировавших при первом исследовании, повторно проверяют через 7 - 10 дн.

4.3.2. Выявление антител у животных, не реагировавших при первом исследовании, или нарастание титра у реагировавших в РМА в 5 и более раз, или положительная РА на 3 - 4 креста свидетельствуют об активном инфекционном процессе у обследуемых животных.

4.3.3. Животных (кроме лошадей и реагирующего с лептоспирами группы Hebdomadis крупного рогатого скота) с титром сыворотки в РМА 1:1500 и более или реагирующих в РА на 3 - 4 креста и крупный рогатый скот, реагирующий с лептоспирами группы Hebdomadis, и лошадей, реагирующих с лептоспирами любой серогруппы при титре в РМА 1:2500 и более или в РА на 3 - 4 креста, рассматривают как возможных лептоспироносителей.

4.3.4. Возбудителями лептоспироза при серологической диагностике считают лептоспир той серологической группы, к которой обнаружены антитела в наиболее высоком титре.

Необходимо учитывать, что в сыворотке крови свиней, крупного и мелкого рогатого скота, лошадей при исследовании по РМА обнаруживают в 5 - 15% случаев (из числа положительно реагирующих) антитела в наиболее высоком титре к лептоспирам Australis, Autumnalis, Ballum, Pyrogenes, Cynopteri, Bataviae, которые не были выделены ни в одном случае от сельскохозяйственных животных. Такие реакции следует рассматривать как межгрупповые, являющиеся следствием заражения животных лептоспирами Pomona, Tarassovi и другими, обычно выделяемыми от сельскохозяйственных животных.

Лептоспиры Australis, Bataviae, Autumnalis, Ballum, Pyrogenes, Cynoptery, Kazachstanica могут быть признаны возбудителями лептоспироза у сельскохозяйственных животных только после выделения этих лептоспир в чистой культуре или подтверждения их роли реакцией иммуноадсорбции.

4.3.5. Животное считают инфицированным лептоспирами серогруппы Hebdomadis в случае обнаружения в сыворотке крови специфических антител к любому из рекомендованных диагностических штаммов лептоспир этой серогруппы.

4.4. Методика постановки реакции иммуноадсорбции при исследовании проб сыворотки

4.4.1. В реакции иммуноадсорбции изучают пробы сыворотки животных, агглютинирующих лептоспиры нескольких серологических групп в равновысоких титрах или имеющие наиболее высокий титр по отношению к лептоспирам, ранее не известным в качестве возбудителя лептоспироза у сельскохозяйственных животных.

4.4.2. Для проведения адсорбции выращивают в 0,2 - 0,5-литровых флаконах все штаммы лептоспир, с которыми данная проба сыворотки дала реакцию агглютинации. К 5 - 7-суточным культурам добавляют 0,3% формалина и выдерживают 10 - 12 ч. Затем лептоспиры осаждают центрифугированием при 10 000 об/мин в течение 30 мин. Сливают надосадочную жидкость, а осадок суспендируют в объеме 0,9 мл среды или физиологического раствора, 0,1 мл исследуемой сыворотки смешивают с 0,9 мл концентрированного антигена и выдерживают 48 ч при температуре 1 - 5 °C. Адсорбированную сыворотку проверяют в РМА на наличие остаточных антител к штамму-абсорбенту, а затем исследуют с лептоспирами групп, с которыми реагировала сыворотка до адсорбции.

4.4.3. В процессе абсорбции лептоспиры, являющиеся возбудителем инфекции у данной особи, извлекают из сыворотки антитела к лептоспирам всех других серологических групп, в то время как антитела к штамму-возбудителю болезни не адсорбируются из сыворотки гетерологичными типами лептоспир.

Для сокращения объема работы сыворотку можно вначале адсорбировать лептоспирами, являющимися наиболее частыми возбудителями болезни у животных данного вида.

4.4.4. Оценка эпизоотической ситуации в хозяйстве по результатам лабораторных исследований приведена в "Инструкции о мероприятиях по борьбе с лептоспирозом животных".

Лептоспиры выращивают в пробирках или флаконах из белого нейтрального стекла, а при их отсутствии - в обычных пробирках.

Предназначенную для культивирования лептоспир посуду не используют для других целей.

Пробирки из обычного стекла, не бывшие в употреблении, обрабатывают по следующей схеме:

промывают проточной водопроводной водой;

выдерживают в течение суток в 1%-ном растворе соляной кислоты в стеклянной или эмалированной посуде;

промывают проточной водопроводной водой и помещают на 1 - 2 ч в мыльный раствор одного из стиральных порошков ("Новость", "Лотос" и др.);

тщательно промывают проточной водопроводной водой и ополаскивают дистиллированной водой;

заливают вымытую посуду дистиллированной водой и стерилизуют в автоклаве при 1 атм 1 ч или выдерживают 2 сут при комнатной температуре, ежедневно меняя воду;

сливают воду и посуду высушивают в сушильном шкафу;

стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 30 мин и при необходимости подсушивают в сушильном шкафу.

Пробирки из нейтрального стекла не обрабатывают в растворе соляной кислоты. Остальные этапы выполняют полностью.

Простерилизованные пробирки используют для расфасовки питательной среды в течение 10 дн. При более длительном хранении их повторно стерилизуют.

Обработку колб, флаконов, бутылей и стеклянных сифонов проводят по этой же методике.

Посуду, в которой уже выращивали лептоспиры, помещают для дезинфекции на сутки в 1%-ный раствор соляной кислоты, после чего обрабатывают по описанной схеме.

Резиновые шланги, используемые в сифонах при фильтрации и разливке среды, должны быть перед употреблением тщательно обработаны.

Новые, не бывшие в употреблении шланги промывают в проточной водопроводной воде, кипятят 30 - 45 мин в 2%-ном растворе питьевой соды, промывают проточной водопроводной водой и снова кипятят в дистиллированной воде 30 - 45 мин, просушивают.

Резиновые пробки обрабатывают по этой же методике.

Предметные и покровные стекла, не бывшие в употреблении, кипятят в стиральном порошке ("Новость", "Лотос" и др.) 30 мин, промывают в проточной воде, ополаскивают дистиллированной водой и насухо протирают ветошью.

Стекла после употребления опускают в эксикатор с 10%-ным раствором соляной кислоты. После накопления достаточного количества использованных стекол кислоту сливают, стекла промывают в проточной водопроводной воде, кипятят в стиральном порошке, промывают водопроводной водой, ополаскивают дистиллированной водой и протирают.

Пластины после учета реакции опускают для обеззараживания в бак с 1%-ным раствором соляной кислоты и выдерживают не менее 1 ч. Затем промывают в теплой мыльной воде, протирая ершиком каждую лунку. Тщательно отмывают в проточной водопроводной воде, заливают дистиллированной водой и выдерживают до следующего утра, воду сливают, пластины просушивают.

Перед постановкой реакции каждую лунку дополнительно протирают ватным тампоном.

Лептоспиры выращивают на сывороточных средах. Лучшей для изготовления сред является сыворотка крови кроликов и баранов. Сыворотка крови доноров, используемая для приготовления питательной среды, не должна содержать специфических противолептоспирозных антител.

Добавляют 5 - 10% сыворотки к дистиллированной, водопроводной, речной, колодезной воде или фосфатному буферу. По этому принципу составлены все жидкие и полужидкие питательные среды. Способствуют росту лептоспир пептон (0,8 - 1%), гемоглобин (0,05%), витамины группы B, PP (по 1 мг на 1 л среды), камполон (экстракт печени) (0,01%) и др.

Изготовление фосфатно-буферных растворов - основы среды. На фосфатном буфере среду готовят только в стеклянной посуде. Сначала готовят маточные растворы из расчета: однозамещенный фосфорнокислый калий (KH₂PO₄) - 9,078 г на 1 л дистиллированной воды, двузамещенный фосфорнокислый натрий (Na₂HPO₄·2H₂O) - 11,876 г на 1 л дистиллированной воды.

Маточные растворы можно хранить при температуре 2 - 4 °C в течение 30 дн. Из них готовят рабочий буферный раствор из расчета:

79 мл маточного раствора двузамещенного фосфорнокислого натрия (Na₂HPO₄·2H₂O),

21 мл маточного раствора однозамещенного фосфорнокислого калия (KH₂PO₄),

900 мл дистиллированной воды.

На потенциометре определяют pH буфера. Он должен быть в пределах 7,2 - 7,4. При отклонении pH в кислую сторону добавляют раствор двузамещенного фосфорнокислого натрия, при отклонении pH в щелочную сторону добавляют раствор однозамещенного фосфорнокислого калия.

Рабочий буферный раствор стерилизуют при температуре 120 °C 30 мин.

Взятие крови и получение сыворотки. Каждая лаборатория для получения сыворотки крови с целью изготовления питательных сред должна содержать животных-доноров. 10 - 15 кроликов породы шиншилла или 2 - 3 баранов. Животные должны быть обеспечены полноценными сбалансированными кормами, включающими достаточное количество витаминов и минеральных солей.

Кровь берут у кроликов из сердца в количестве 30 - 40 мл в 100 - 200-миллилитровые стерильные цилиндры или шприцем, из которого кровь переливают в стерильные пробирки. Кровь у барана в количестве 400 - 500 мл берут из яремной вены в 0,5 - 1-литровые стерильные цилиндры.

Цилиндры или пробирки с кровью выдерживают в термостате при температуре 37 °C 30 - 40 мин, затем кровяной сгусток обводят металлической спицей и ставят цилиндры или пробирки в холодильник на 1 - 2 сут для отстаивания сыворотки. Отстоявшуюся сыворотку сливают в 100 - 200-миллилитровые стерильные флаконы и инактивируют в водяной бане при температуре 56 - 58 °C в течение 1 ч.

Инактивированную сыворотку хранят в холодильнике при температуре 1 - 5 °C и используют по мере необходимости для изготовления питательной среды.

Водно-сывороточная среда. Воду дистиллированную, водопроводную, колодезную или речную разливают по пробиркам (по 5 мл) и стерилизуют. После охлаждения добавляют в каждую пробирку по 0,5 мл свежей кроличьей сыворотки, инактивированной в водяной бане при температуре 56 - 58 °C 30 мин. Среду для проверки на стерильность выдерживают в термостате при 37 °C в течение 3 - 5 сут.

Водно-сывороточную среду в ветеринарных лабораториях готовят по модифицированной прописи. Рабочий раствор фосфатного буфера (pH 7,2 - 7,4) в количестве 1,4 л разливают в бутыли с сифоном, стерилизуют в автоклаве при 0,8 атм 30 мин (по С.И. Тарасову). Фильтр Зейтца с пластиной СФ монтируют на 3 - 5-литровой бутыли и стерилизуют при 1 атм 1 ч. В охлажденный буферный раствор добавляют 5 - 10% инактивированной сыворотки кролика или барана и (при наличии) 0,01% камполона (по Л.С. Новиковой). Смесь фильтруют через фильтр Зейтца (по С.Я. Любашенко), для чего бутыль со средой ставят на 1 - 1,5 м выше фильтра. Профильтрованную среду расфасовывают сифоном в стерильные пробирки или флаконы. Среду для проверки на стерильность выдерживают в термостате при температуре 37 °C в течение 3 - 5 сут.

Среда Ферворта-Вольфа в модификации С.И. Тарасова. Дистиллированной воды 900 мл, хлористого натрия 0,5 г, пептона (Дифко или Витте) 1 г, маточного раствора фосфатного буфера с pH 7,2 100 мл. Смесь в колбе автоклавируют при 1 атм 30 мин. На следующий день ее дважды фильтруют через бумажный фильтр, разливают в пробирки по 5 мл и снова автоклавируют при 1 атм 30 мин. В пробирки с прозрачной средой добавляют по 0,5 мл кроличьей сыворотки. Среду прогревают в водяной бане при температуре 56 - 58 °C 30 мин.

Для проверки на стерильность пробирки со средой выдерживают в термостате при температуре 37 °C в течение 3 - 5 сут.

Полужидкая среда Флетчера. К 1 л дистиллированной воды добавляют 2 г агар-агара (лучше агар Дифко). Смесь кипятят 30 мин, расфасовывают по 5 мл в пробирки, автоклавируют при 0,8 атм в течение 30 мин, охлаждают, добавляют в каждую пробирку по 0,5 мл стерильной кроличьей или овечьей сыворотки, прогревают в водяной бане при температуре 56 - 58 °C 30 мин. Среду контролируют на стерильность выдержкой в термостате при 37 °C в течение 3 - 5 сут.

Каждая из приведенных сред обеспечивает выделение культур лептоспир из исследуемого материала и поддержание диагностических штаммов лептоспир.